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曾建议成立翻译共同体的,得一些战友支持,选此书练笔,一度中止,偶会继续努力!
绒毛组织培养
样本准备:20ml注射器,含6ml无血清RPMI1640及两滴500IU/ml的肝素
将绒毛组织吸入注射器内,再注入皮氏培养皿后,送至实验室处理
1。倒置显微镜下观察,用细镊子将绒毛组织与蜕膜仔细分离,可用HBSS液清洗,将样本分成两等份,一份用于直接法,一份用于培养。
2。直接法:
将皮氏盘内的培养液换成3ml 37 C 预热20%灭活的胎牛血清,1%庆大霉素,放置于5%CO2,100%湿度的培养箱
3。同步化
培养3小时后,加入0.1ml10-5MFUdR 液
孵育15小时
加入0.1ml10-3MThymidine,继续培养5小时
加入0.1秋水仙素至终浓度为10ug/ml,孵育1小时
4。收获细胞
移出培养箱,巴斯德吸管轻轻吸去培养液
慢慢加入3ml1%柠檬酸钠(预热37C),37C孵育20分钟
缓缓加入0.5ml固定液,中止低渗作用
吸去低渗/固定液,边摇边滴加新鲜固定液2ml(甲醇:乙酸,3:1),清洗绒毛组织,吸去固定液,再加入新鲜固定液2ml
冰箱过夜,或20分钟(24小时出结果)
吸去固定液,室温放置约1-2分钟,风干
加入100-200ul60%乙酸液,按样本的多少调整溶液体积大小
倒置显微镜下观察,绒毛组织释放出的游离细胞,轻轻晃动,观察其数目的多少,如满意,继续制片步骤
5。制片
制作专用的“耙子”,用巴斯德吸管,在其未端1英寸处,熔弯成90度角。“耙子”在固定细胞上来回运动,使液体分布均匀
玻片表面加热至45C
加入100ul细胞悬液至已标记的玻片表面,一手拿弯耙,另一手拿玻片,用制好的耙子弯端只与液滴相接触,而勿与玻片表面接触,沿玻片的长将液滴铺开在玻片中间部分(50%-60%),两者相互来回运动3-4次即可,撤去玻片,将剩余的悬液点样,用相差显微镜观察分裂相的分布情况。玻片在孵育炉内干燥。
6。染色
孵育后,玻片冷至室温,用30%的过氧化氢(双氧水)预处理10分钟;取其中一块玻片作胰酶及染色时间的预实验,浸入酶-PBS液(0.2ml胰酶+50mlPBS,pH 6.8),立即取出,清水漂洗,空干,瑞氏染色3-5分钟,清水漂洗,空干。
注意:
加入FUdR和thymidine的时间可以调整,(15-17h;3-8h)
建议上午8-10AM收集标本,下午3PM加FUdR。
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