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我是上周开始正式自己培养CD4CD8细胞的。有些问题请教。
1 我用密度梯度离心法分离了单个 核细胞后,用HANKS液洗涤两遍。1000r/min,每次试管底部有层白色膜状物,很多次,我加了1640液后,都无论振荡,或用吸管吹打都不能让它消失,在1640里象小头屑一样漂浮着。是不是1000r/min的速度还是太快,致使离心力太大,单个核细胞都给紧紧的粘在一起了?我打算调慢到800-900r/min,会不会影响单个核细胞的纯度呢?有没有其他好办法?
2 我用过尼龙柱法分离淋巴细胞,有人指点尼龙棉既不能太紧,也不能太松,要均匀,书上说是2cm的柱子就能分离2*10的7次方的细胞数,尼龙棉定量在40-70mg。是否有过来人指点一下。
3 我在24孔培养板上养CD4,CD8。92小时,不换培养液的。24小时后,孔眼里出现白色沉淀,静置稍久,沉淀聚集在孔眼中央,象八脚章鱼一样伸出一些触角,培养液是透明的。显微镜下观察是铺得密密麻麻搞不清是细胞还是别的什么,轻轻晃晃,则沉淀消失,培养液变浑浊。我吸取了一些,加了台盼兰和1640稀释。放到血球计数板上镜下观察,则只见到满视野的细胞。没见到真菌孢子。这些沉淀是不是战友们说的死细胞呢?还是我在制细胞悬液时没有将细胞吹打开的细胞团快呢?
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