IBC会议Audrey Jia 的报告：细胞系开发中涉及细胞株单克隆源性的法规等

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2021-07-26

问题描述：

看到之前的一个朋友也发了IBC会议的PPT内容，不过好像没有这个PPT（不确定，要是重复了请见谅）。

因为会议上投影的问题，当时有些内容贾老师没介绍太多。不过内容相当不错，主要是国内比较缺乏这方面的信息和经验。可以算得上是干货吧，不过里面主要是一些规则性或方向性的内容，需要具体细节，只能花钱请她做顾问了。

AudreyJia是美籍华人，在FDA做CMCReviewer之前也一直是从事细胞开发及细胞培养的工作。她应该也是目前唯一一个生物大分子部门中，唯一从FDA离职出来从事顾问工作的。可能很多国内单抗药企大佬都认识她，可能很多园子里面的人也见过她了。

谁能赏几个积分啊？新人，没积分，一些东西想看或者下载都不行。

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感谢分享，鼓励新人，我给你打赏，多交流自然有收获！

Monoclonality_JIA1.pdf(952.57k)

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jackieustc

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看完PPT想与大家谈论过去美国是如何进行的，是否有因为单克隆的问题，项目失败或者曲折（由于不是单克隆，培养工艺处问题）的先例；技术都是随着需要发展而发展的，早些年估计也是稀里糊涂干的。现在强调单克隆性肯定是对的，但是如果没有这方面的记录或者证明，那将来审评或者审批是否意味着项目死掉，如楼主所述，在临床三期前必须确定，有图像证据能证明也可以。但是如果没有图像证明，采用传统方法只进行了一轮有限稀释挑选的克隆做的临床I和II期，三期前进行新一轮的克隆筛选，并且建立新的MCB和WCB，并且和之前的批次进行变更对比。

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laorentou

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展开引用laorentoutangwei6223laorentoutangwei6223laorentoutangwei6223laorentou在没有客观图像技术之前，只能靠两轮以上的有限稀释法来来保证克隆的单克隆性，这也是所说的理论上相对单克隆性。强调单克隆性其实是为了降低自己以后生产的风险，如果不是单克隆的话一个药买了几年以后就会不一样了。理论上是指0.5个细胞每孔接种96孔板然后长出的克隆，经过两轮亚克隆应该可以达到相对纯度的单克隆。其实也有一个笨方法我以前也用过的，等接种以后，可以在显微镜下观察每个96孔板的细胞个数，然后标记有一个细胞的孔。最后挑克隆的时候就挑这些标记的孔，观察的过程会很累的，可以尝试一下感觉杂交瘤细胞都是这样做法，因为杂交瘤是贴壁生长的，比较容易看清，但是CHO细胞是悬浮的，从培养箱中拿出来的时候还有可能晃动，估计辨别起来有点难度吧。一般都是培养箱中静置4个小时以后再观察的，没有条件的时候只能用显微镜观察。贴一张之前拍下来的单克隆形成过程。缺点就是有细胞影子，可能是板子反光原因。你这是用什么拍的啊？直接在显微镜下用相机拍摄的？？去年买的一台设备拍的，为了今年准备报FDA临床准备的。我觉得把这个图像数据甩到审查员面前，应该没什么话说了。相当可以，很直观啊。这个影子主要还是细胞悬浮在培养基里造成的吧？是板子的质量不好引起的折光，然后就出现影子的。有的孔就不会出现这样的情况，所以需要用好的板子。......刚才关于细胞影子问题，已得到专家解释了。贴出来和大家分享一下；一般发现，在靠近孔边缘的时候，容易出现细胞影子的现象。主要的原因是：由于液面表面张力的关系，在孔边缘形成弧形液面，导致光折射及孔壁反射形成的影子。可以两种方式比较好的解决：1.降低液面高度，即铺板体积减小，后期再补液。这样可以比较有效地降低影子的范围和清晰度；2.改用黑壁底透的培养板。

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jackieustc

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谢谢分享，有资料多分享几个，或者总结当时讲的内容

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pk1206

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只听了几个报告，了解的比较少。但Audrey的报告，因为其他的原因，我倒是听了好几遍。涉及比较有意思的几点：1.有限稀释法的铺板浓度必须小于0.5cell/well。这是经验，同时也是FDA比较认可的方式，高于0.5的话，单克隆率太低，尤其在无Imager的情况下，得到单克隆细胞株的概率较低。在使用Imager的情况下，单克隆概率的问题影响不大，但铺板浓度会影响克隆总数及单克隆的比率，因此，她还是建议小于0.5cell/well，公司研究人员可根据自己项目情况进行合理的浓度优化。2.关于非人源检测试剂及添加物的处置。这主要针对Clonepix及FACS，由于这两种挑选或者铺板方式会涉及试剂或者添加物，如二抗（鼠源、兔源、山羊源等），ProteinA/G(Clonepix中用于标示表达IgG浓度的)，甲基纤维素，荧光标签等。针对这些添加物，必须进行风险控制（风险由IND、CDE申请者承担），包括来源说明，成分define，残留检测，对细胞的影响等。每一项的检测都会涉及方法的开发以及方法学的验证，很累也很难！3.FACS和Clonepix的交叉污染的问题。这个交叉污染主要是指不同项目/细胞株使用同一套设备进行克隆挑选，如何对不同项目/细胞株交叉污染进行控制，并确认，以及方法和流程如何等。关于这一点，我跟不少客户聊起来过，交叉污染的控制是国内不少客户最终决定放弃FACS和Clonpix挑选细胞的最主要原因。这一点上，与国外知名药企不同的是（如Roche），他们对于FACS和Clonepix有10几年的使用经验，并具有完整的技术手段及反复验证过的方法进行风险控制；而国内企业缺乏这方面的技术储备，很难实现，或者实现的代价过高。4.临床申请的细胞系单克隆要求。根据Audrey建议，起始美国FDA在临床一期并不会对申请者明确要求单克隆源性，但是临床三期必须确认。Audrey的解释：风险自担！为了能比竞争对手更快上临床，有些客户愿意承担这个风险。（在会场上有一个参会老师提问，国外某知名药企甚至有用顺转细胞系申请临床）。但无论如何，三期必须提供细胞系的单克隆源性证据。临床前不做，那么临床三期前，必须从头再来一遍。这点上的理念，可能跟国内有很大差别：首先，国内尚未要求细胞系的单克隆源性，如果不是海外也报临床，一些企业认为不用做，或者无所谓；其次：误会国外某知名企业，未提供单克隆源性，也能直接开始临床一期，他们也可以跟着这么做，殊不知项目管理、风险控制及资源根本不在一个数量级；再次：国内很多小一点的企业，并不打算自己直接将项目做到三期，基本上做到临床前就转让了，单克隆源性也就不那么重要了。5.Solentim（品牌）CellMetric（型号）使用Tips。应该也有不少我的客户在园子里面，可能你们了解，也可能我没提及，这里简单说一点点。1.疑罪从无。任何存在单克隆性判断上存在疑虑/争议的，必须放弃或再亚克隆；2.可在正式铺板前，在准备铺板的细胞板中，加入少量的无细胞培养基，并进行成像，获得板的基础背景，可以更为有效地判断细胞单克隆性；3.铺板浓度最好进行一定的优化，以获得较好的细胞clony总数和细胞单克隆孔数量。这会大大提高细胞筛选效率；4.在挑好合适的单克隆孔以后，请及时对该孔做好Tag及Annotation，这样在最后出具单克隆源性报告时，会大大降低工作量并不容易出错。好在单克隆源性，在国内也越来越被重视，也是一种法规倒逼（对我这样做业务的来说绝对是好事，呵呵）。目前，感觉下来，使用Imager方式比较有吸引力的主要两点：1.直接的影像证据，说明细胞系的单克隆源性，比单纯的单克隆泊松分布概率更严谨，也更有说服力；2.一旦确定单克隆源性，无需第二轮有限稀释，节省开发时间。

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醉默沙洲

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谢谢分享，很受用！

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jackieustc

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laorentou

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在没有客观图像技术之前，只能靠两轮以上的有限稀释法来来保证克隆的单克隆性，这也是所说的理论上相对单克隆性。强调单克隆性其实是为了降低自己以后生产的风险，如果不是单克隆的话一个药买了几年以后就会不一样了。理论上是指0.5个细胞每孔接种96孔板然后长出的克隆，经过两轮亚克隆应该可以达到相对纯度的单克隆。其实也有一个笨方法我以前也用过的，等接种以后，可以在显微镜下观察每个96孔板的细胞个数，然后标记有一个细胞的孔。最后挑克隆的时候就挑这些标记的孔，观察的过程会很累的，可以尝试一下感觉

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pk1206

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展开引用jackieustc看完PPT想与大家谈论过去美国是如何进行的，是否有因为单克隆的问题，项目失败或者曲折（由于不是单克隆，培养工艺处问题）的先例；技术都是随着需要发展而发展的，早些年估计也是稀里糊涂干的。现在强调单克隆性肯定是对的，但是如果没有这方面的记录或者证明，那将来审评或者审批是否意味着项目死掉，如楼主所述，在临床三期前必须确定，有图像证据能证明也可以。但是如果没有图像证明，采用传统方法只进行了一轮有限稀释挑选的克隆做的临床I和II期，三期前进行新一轮的克隆筛选，并且建立新的MCB和WCB，并且和之前的批次进行变更对比。......在单克隆源性证据提出来以前，基本上是两轮有限稀释是可以接受的（<0.5cell/well,2rounds,clonalitypossIBLity>95%）。后来又提出需辅以泊松分布来预估单克隆概率，再后来发现泊松分布的概率会与实际差别较大（用Imager验证泊松分布），到现在是普遍希望用Imager方式提供可观细胞单克隆的证据。关于案例，贾老师的PPT第21页，列举了IND/CDE申请遇到的三个客户案例（有她经手的，也有她同事经手的），最后发现均是由于细胞非单克隆导致的。这个问题，我也请教过：项目终止可能性不大，但是制药企业为此付出的肯定不少。关于Imager提供单克隆源性证据是否必须，我的个人观点：1.非必须，只是影像可观的证明更为简便。起码在目前，用传统的2轮有限稀释仍然是被接受的；2.竞争的倒逼，这种情况在国内可能会更严重。一旦较多的制药企业采用Imager方式来证明单克隆源性，那么剩余其他的也必将跟进，采用这种更为客观有效的方式；3.Imager能更省时间啊，一旦确定了单克隆源性，无需第二轮亚克隆。最后这一点，对我们业务而言绝对是MostValuableDemand.

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pk1206

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展开引用laorentou在没有客观图像技术之前，只能靠两轮以上的有限稀释法来来保证克隆的单克隆性，这也是所说的理论上相对单克隆性。强调单克隆性其实是为了降低自己以后生产的风险，如果不是单克隆的话一个药买了几年以后就会不一样了。理论上是指0.5个细胞每孔接种96孔板然后长出的克隆，经过两轮亚克隆应该可以达到相对纯度的单克隆。其实也有一个笨方法我以前也用过的，等接种以后，可以在显微镜下观察每个96孔板的细胞个数，然后标记有一个细胞的孔。最后挑克隆的时候就挑这些标记的孔，观察的过程会很累的，可以尝试一下感觉......附件是澳大利亚CSL公司的Arna一个PPT报告（他也是我们代理产品的一个客户，呵呵）。Arna在报告中列出了很多的数据，包括概率分布分析，1~3轮有限稀释对单克隆源性的影响，等等。可以再探讨探讨。呵呵。ArnaAndrewsCSLLimited(1).pdf(524.32k)

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tangwei6223

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展开引用laorentou在没有客观图像技术之前，只能靠两轮以上的有限稀释法来来保证克隆的单克隆性，这也是所说的理论上相对单克隆性。强调单克隆性其实是为了降低自己以后生产的风险，如果不是单克隆的话一个药买了几年以后就会不一样了。理论上是指0.5个细胞每孔接种96孔板然后长出的克隆，经过两轮亚克隆应该可以达到相对纯度的单克隆。其实也有一个笨方法我以前也用过的，等接种以后，可以在显微镜下观察每个96孔板的细胞个数，然后标记有一个细胞的孔。最后挑克隆的时候就挑这些标记的孔，观察的过程会很累的，可以尝试一下感觉......杂交瘤细胞都是这样做法，因为杂交瘤是贴壁生长的，比较容易看清，但是CHO细胞是悬浮的，从培养箱中拿出来的时候还有可能晃动，估计辨别起来有点难度吧。

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pk1206

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展开引用tangwei6223laorentou在没有客观图像技术之前，只能靠两轮以上的有限稀释法来来保证克隆的单克隆性，这也是所说的理论上相对单克隆性。强调单克隆性其实是为了降低自己以后生产的风险，如果不是单克隆的话一个药买了几年以后就会不一样了。理论上是指0.5个细胞每孔接种96孔板然后长出的克隆，经过两轮亚克隆应该可以达到相对纯度的单克隆。其实也有一个笨方法我以前也用过的，等接种以后，可以在显微镜下观察每个96孔板的细胞个数，然后标记有一个细胞的孔。最后挑克隆的时候就挑这些标记的孔，观察的过程会很累的，可以尝试一下感觉杂交瘤细胞都是这样做法，因为杂交瘤是贴壁生长的，比较容易看清，但是CHO细胞是悬浮的，从培养箱中拿出来的时候还有可能晃动，估计辨别起来有点难度吧。......根据我做DEMO实验的经验，CHO细胞在孔内移动，更多的是因为细胞自身的迁移，而非取放板的晃动。根据客户反馈，细胞的这种迁移与培养基和细胞板有关。曾有客户专门提出过这个质疑，因此，我们专门做了一个测试：在一块板拍摄完成后，取出板，用手剧烈晃动几次，重新拍摄，细胞几乎不移动。当然，小心点取放板，还是有好处的。细胞位置的移动，会对其单克隆性判断造成极大的困扰。因此，遇到这种情况，我们通常都会建议客户做一些优化。需要说明的是：我遇到的绝大多数情况，CHO细胞一旦沉底后，几乎不移动或者移动范围很小。另外，CHO细胞原本应该也是贴壁细胞，尽管改良后，其悬浮性极佳，但在静置培养时，还是能看出其贴壁的“本能”。如果带血清培养，可以在照片中看到大量的贴壁扁平CHO细胞。CHOK1最为明显。

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pk1206

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关于细胞迁移，分享一个比较有意思的事情：曾经有一个客户，用我们仪器做实验，因为他们的培养基比较脏（或者说沉底的碎片特别特别多），在连续成像的过程中，可以看到细胞的整个迁移过程。就跟河蚌在泥上爬过的痕迹一样。很极端、很特别的情况！

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laorentou

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tangwei6223

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展开引用laorentoutangwei6223laorentou在没有客观图像技术之前，只能靠两轮以上的有限稀释法来来保证克隆的单克隆性，这也是所说的理论上相对单克隆性。强调单克隆性其实是为了降低自己以后生产的风险，如果不是单克隆的话一个药买了几年以后就会不一样了。理论上是指0.5个细胞每孔接种96孔板然后长出的克隆，经过两轮亚克隆应该可以达到相对纯度的单克隆。其实也有一个笨方法我以前也用过的，等接种以后，可以在显微镜下观察每个96孔板的细胞个数，然后标记有一个细胞的孔。最后挑克隆的时候就挑这些标记的孔，观察的过程会很累的，可以尝试一下感觉杂交瘤细胞都是这样做法，因为杂交瘤是贴壁生长的，比较容易看清，但是CHO细胞是悬浮的，从培养箱中拿出来的时候还有可能晃动，估计辨别起来有点难度吧。一般都是培养箱中静置4个小时以后再观察的，没有条件的时候只能用显微镜观察。贴一张之前拍下来的单克隆形成过程。缺点就是有细胞影子，可能是板子反光原因。......你这是用什么拍的啊？直接在显微镜下用相机拍摄的？？

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laorentou

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展开引用tangwei6223laorentoutangwei6223laorentou在没有客观图像技术之前，只能靠两轮以上的有限稀释法来来保证克隆的单克隆性，这也是所说的理论上相对单克隆性。强调单克隆性其实是为了降低自己以后生产的风险，如果不是单克隆的话一个药买了几年以后就会不一样了。理论上是指0.5个细胞每孔接种96孔板然后长出的克隆，经过两轮亚克隆应该可以达到相对纯度的单克隆。其实也有一个笨方法我以前也用过的，等接种以后，可以在显微镜下观察每个96孔板的细胞个数，然后标记有一个细胞的孔。最后挑克隆的时候就挑这些标记的孔，观察的过程会很累的，可以尝试一下感觉杂交瘤细胞都是这样做法，因为杂交瘤是贴壁生长的，比较容易看清，但是CHO细胞是悬浮的，从培养箱中拿出来的时候还有可能晃动，估计辨别起来有点难度吧。一般都是培养箱中静置4个小时以后再观察的，没有条件的时候只能用显微镜观察。贴一张之前拍下来的单克隆形成过程。缺点就是有细胞影子，可能是板子反光原因。你这是用什么拍的啊？直接在显微镜下用相机拍摄的？？......去年买的一台设备拍的，为了今年准备报FDA临床准备的。我觉得把这个图像数据甩到审查员面前，应该没什么话说了。

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tangwei6223

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展开引用laorentoutangwei6223laorentoutangwei6223laorentou在没有客观图像技术之前，只能靠两轮以上的有限稀释法来来保证克隆的单克隆性，这也是所说的理论上相对单克隆性。强调单克隆性其实是为了降低自己以后生产的风险，如果不是单克隆的话一个药买了几年以后就会不一样了。理论上是指0.5个细胞每孔接种96孔板然后长出的克隆，经过两轮亚克隆应该可以达到相对纯度的单克隆。其实也有一个笨方法我以前也用过的，等接种以后，可以在显微镜下观察每个96孔板的细胞个数，然后标记有一个细胞的孔。最后挑克隆的时候就挑这些标记的孔，观察的过程会很累的，可以尝试一下感觉杂交瘤细胞都是这样做法，因为杂交瘤是贴壁生长的，比较容易看清，但是CHO细胞是悬浮的，从培养箱中拿出来的时候还有可能晃动，估计辨别起来有点难度吧。一般都是培养箱中静置4个小时以后再观察的，没有条件的时候只能用显微镜观察。贴一张之前拍下来的单克隆形成过程。缺点就是有细胞影子，可能是板子反光原因。你这是用什么拍的啊？直接在显微镜下用相机拍摄的？？去年买的一台设备拍的，为了今年准备报FDA临床准备的。我觉得把这个图像数据甩到审查员面前，应该没什么话说了。......相当可以，很直观啊。这个影子主要还是细胞悬浮在培养基里造成的吧？

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laorentou

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展开引用tangwei6223laorentoutangwei6223laorentoutangwei6223laorentou在没有客观图像技术之前，只能靠两轮以上的有限稀释法来来保证克隆的单克隆性，这也是所说的理论上相对单克隆性。强调单克隆性其实是为了降低自己以后生产的风险，如果不是单克隆的话一个药买了几年以后就会不一样了。理论上是指0.5个细胞每孔接种96孔板然后长出的克隆，经过两轮亚克隆应该可以达到相对纯度的单克隆。其实也有一个笨方法我以前也用过的，等接种以后，可以在显微镜下观察每个96孔板的细胞个数，然后标记有一个细胞的孔。最后挑克隆的时候就挑这些标记的孔，观察的过程会很累的，可以尝试一下感觉杂交瘤细胞都是这样做法，因为杂交瘤是贴壁生长的，比较容易看清，但是CHO细胞是悬浮的，从培养箱中拿出来的时候还有可能晃动，估计辨别起来有点难度吧。一般都是培养箱中静置4个小时以后再观察的，没有条件的时候只能用显微镜观察。贴一张之前拍下来的单克隆形成过程。缺点就是有细胞影子，可能是板子反光原因。你这是用什么拍的啊？直接在显微镜下用相机拍摄的？？去年买的一台设备拍的，为了今年准备报FDA临床准备的。我觉得把这个图像数据甩到审查员面前，应该没什么话说了。相当可以，很直观啊。这个影子主要还是细胞悬浮在培养基里造成的吧？......是板子的质量不好引起的折光，然后就出现影子的。有的孔就不会出现这样的情况，所以需要用好的板子。

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laorentou

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蝶澈112233

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展开引用laorentoulaorentoutangwei6223laorentoutangwei6223laorentoutangwei6223laorentou在没有客观图像技术之前，只能靠两轮以上的有限稀释法来来保证克隆的单克隆性，这也是所说的理论上相对单克隆性。强调单克隆性其实是为了降低自己以后生产的风险，如果不是单克隆的话一个药买了几年以后就会不一样了。理论上是指0.5个细胞每孔接种96孔板然后长出的克隆，经过两轮亚克隆应该可以达到相对纯度的单克隆。其实也有一个笨方法我以前也用过的，等接种以后，可以在显微镜下观察每个96孔板的细胞个数，然后标记有一个细胞的孔。最后挑克隆的时候就挑这些标记的孔，观察的过程会很累的，可以尝试一下感觉杂交瘤细胞都是这样做法，因为杂交瘤是贴壁生长的，比较容易看清，但是CHO细胞是悬浮的，从培养箱中拿出来的时候还有可能晃动，估计辨别起来有点难度吧。一般都是培养箱中静置4个小时以后再观察的，没有条件的时候只能用显微镜观察。贴一张之前拍下来的单克隆形成过程。缺点就是有细胞影子，可能是板子反光原因。你这是用什么拍的啊？直接在显微镜下用相机拍摄的？？去年买的一台设备拍的，为了今年准备报FDA临床准备的。我觉得把这个图像数据甩到审查员面前，应该没什么话说了。相当可以，很直观啊。这个影子主要还是细胞悬浮在培养基里造成的吧？是板子的质量不好引起的折光，然后就出现影子的。有的孔就不会出现这样的情况，所以需要用好的板子。刚才关于细胞影子问题，已得到专家解释了。贴出来和大家分享一下；一般发现，在靠近孔边缘的时候，容易出现细胞影子的现象。主要的原因是：由于液面表面张力的关系，在孔边缘形成弧形液面，导致光折射及孔壁反射形成的影子。可以两种方式比较好的解决：1.降低液面高度，即铺板体积减小，后期再补液。这样可以比较有效地降低影子的范围和清晰度；2.改用黑壁底透的培养板。......这个是养的什么细胞啊！细胞克隆形成真好！用的什么培养基

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laorentou

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展开引用蝶澈112233laorentoulaorentoutangwei6223laorentoutangwei6223laorentoutangwei6223laorentou在没有客观图像技术之前，只能靠两轮以上的有限稀释法来来保证克隆的单克隆性，这也是所说的理论上相对单克隆性。强调单克隆性其实是为了降低自己以后生产的风险，如果不是单克隆的话一个药买了几年以后就会不一样了。理论上是指0.5个细胞每孔接种96孔板然后长出的克隆，经过两轮亚克隆应该可以达到相对纯度的单克隆。其实也有一个笨方法我以前也用过的，等接种以后，可以在显微镜下观察每个96孔板的细胞个数，然后标记有一个细胞的孔。最后挑克隆的时候就挑这些标记的孔，观察的过程会很累的，可以尝试一下感觉杂交瘤细胞都是这样做法，因为杂交瘤是贴壁生长的，比较容易看清，但是CHO细胞是悬浮的，从培养箱中拿出来的时候还有可能晃动，估计辨别起来有点难度吧。一般都是培养箱中静置4个小时以后再观察的，没有条件的时候只能用显微镜观察。贴一张之前拍下来的单克隆形成过程。缺点就是有细胞影子，可能是板子反光原因。你这是用什么拍的啊？直接在显微镜下用相机拍摄的？？去年买的一台设备拍的，为了今年准备报FDA临床准备的。我觉得把这个图像数据甩到审查员面前，应该没什么话说了。相当可以，很直观啊。这个影子主要还是细胞悬浮在培养基里造成的吧？是板子的质量不好引起的折光，然后就出现影子的。有的孔就不会出现这样的情况，所以需要用好的板子。刚才关于细胞影子问题，已得到专家解释了。贴出来和大家分享一下；一般发现，在靠近孔边缘的时候，容易出现细胞影子的现象。主要的原因是：由于液面表面张力的关系，在孔边缘形成弧形液面，导致光折射及孔壁反射形成的影子。可以两种方式比较好的解决：1.降低液面高度，即铺板体积减小，后期再补液。这样可以比较有效地降低影子的范围和清晰度；2.改用黑壁底透的培养板。这个是养的什么细胞啊！细胞克隆形成真好！用的什么培养基......CHOK1细胞，用的是无血清培养基筛选亚克隆的，一般0.5cell/孔都可以形成这样的克隆。

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pk1206

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@laorentou感谢提供照片。如下是SolentimCellMetric仪器软件自动生成的PDF格式、细胞单克隆源性报告。该报告可直接与IND/CDE对接。供参考。另外，该软件也可直接生成PPT格式报告，具体内容与PDF相同，不同的是PPT格式可再编辑，以便于内部沟通交流。报告内容细节包含：项目名称、培养板编号、孔号、页码及拍照时间。主体内容包括：细胞培养及拍摄的时间线、主追踪区（一个，主要用于跟踪目标细胞）、碎片跟踪（最多可三个，主要用于跟踪疑似细胞的碎片、杂质等）、Annotation注释等。这个软件系统生成的单克隆源性报告与铺板方式一起提交，是允许一轮克隆的根本保证。

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caixiazcx

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我们有一台MD的CSI，使用这台仪器观察有限稀释铺的板子，细胞真的会移动，今天扫可能还在孔上边缘，再扫的时候就跑到了下边缘或者其他位置，不会固定在一个位置的。已经多次证明这个问题。

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pk1206

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展开引用caixiazcx我们有一台MD的CSI，使用这台仪器观察有限稀释铺的板子，细胞真的会移动，今天扫可能还在孔上边缘，再扫的时候就跑到了下边缘或者其他位置，不会固定在一个位置的。已经多次证明这个问题。......嗯。是的。细胞的这种移动往往是自身迁移造成的，并且跟培养基配方，板子类型等因素有关。细胞迁移会对单克隆源性判断造成困扰。如果有这种情况，最好对静置培养做一些优化。----------------------深入谈谈静止培养优化。

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pk1206

用户

展开引用pk1206caixiazcx我们有一台MD的CSI，使用这台仪器观察有限稀释铺的板子，细胞真的会移动，今天扫可能还在孔上边缘，再扫的时候就跑到了下边缘或者其他位置，不会固定在一个位置的。已经多次证明这个问题。嗯。是的。细胞的这种移动往往是自身迁移造成的，并且跟培养基配方，板子类型等因素有关。细胞迁移会对单克隆源性判断造成困扰。如果有这种情况，最好对静置培养做一些优化。----------------------深入谈谈静止培养优化。......没能力深入谈，呵呵。我读书的时候养黑曲霉和E.Coli的。因为工作的关系，才开始了解一些关于CHO培养方便的信息，极其有限。1.静置培养与悬浮培养目的差别比较大：静置为了筛克隆，形成有效的Clony是最终目的；悬浮培养更多的为了生产蛋白。静置培养更多时候目标：细胞成活率高一些，克隆孔多一些，细胞迁移少一些（主要由于Imager判断单克隆源性）。我经常碰到的客户问题就是：细胞在罐子、摇瓶里面长得特别好，但在细胞板中就是长不出克隆团；或者要接种5-10个细胞才能形成有效的Clony。2.细胞培养基和细胞株是关键。但是这方面我确实不懂，请各位畅谈，我学习！我可以聊一点其他方面的。3.血清的问题：我一直以为在筛选的时候，最好不要加血清进行培养。但跟贾老师聊过后，发现FDA人为，血清可以加，但是得确认来源（比如FDA禁止来自疯牛病地区的血清）。但是否会因为加了血清之后，需要做额外的验证，有待核实。4.细胞培养板的问题：如下截图，来自于澳大利亚CSL公司ArnaAndrew，可以看到不同的96孔板会体现出完全不同的细胞存活、细胞生长以及细胞迁移的情况。这一点上，我发现国内只有少数公司做过这方面的测试。当然，如下的材料只是为了说明在不同的培养板中，细胞状态会不一样，具体选择何种细胞板，跟细胞株是直接相关的。5.培养体积：384孔板的克隆形成率会高于96孔板，每孔内的培养液体积会影响细胞的生长与增值。甚至可以考虑比常规384孔板更小体积的半孔板，可以中途补液。只是，铺板的实验人员会比较辛苦，384孔板太难加了。。。。。暂时想到的就这些。。。外行的想法，请指正。

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starrywarlock

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马克下，干货还挺多的。谢谢分享。

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xiaoheizi321

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展开引用laorentou蝶澈112233laorentoulaorentoutangwei6223laorentoutangwei6223laorentoutangwei6223laorentou在没有客观图像技术之前，只能靠两轮以上的有限稀释法来来保证克隆的单克隆性，这也是所说的理论上相对单克隆性。强调单克隆性其实是为了降低自己以后生产的风险，如果不是单克隆的话一个药买了几年以后就会不一样了。理论上是指0.5个细胞每孔接种96孔板然后长出的克隆，经过两轮亚克隆应该可以达到相对纯度的单克隆。其实也有一个笨方法我以前也用过的，等接种以后，可以在显微镜下观察每个96孔板的细胞个数，然后标记有一个细胞的孔。最后挑克隆的时候就挑这些标记的孔，观察的过程会很累的，可以尝试一下感觉杂交瘤细胞都是这样做法，因为杂交瘤是贴壁生长的，比较容易看清，但是CHO细胞是悬浮的，从培养箱中拿出来的时候还有可能晃动，估计辨别起来有点难度吧。一般都是培养箱中静置4个小时以后再观察的，没有条件的时候只能用显微镜观察。贴一张之前拍下来的单克隆形成过程。缺点就是有细胞影子，可能是板子反光原因。你这是用什么拍的啊？直接在显微镜下用相机拍摄的？？去年买的一台设备拍的，为了今年准备报FDA临床准备的。我觉得把这个图像数据甩到审查员面前，应该没什么话说了。相当可以，很直观啊。这个影子主要还是细胞悬浮在培养基里造成的吧？是板子的质量不好引起的折光，然后就出现影子的。有的孔就不会出现这样的情况，所以需要用好的板子。刚才关于细胞影子问题，已得到专家解释了。贴出来和大家分享一下；一般发现，在靠近孔边缘的时候，容易出现细胞影子的现象。主要的原因是：由于液面表面张力的关系，在孔边缘形成弧形液面，导致光折射及孔壁反射形成的影子。可以两种方式比较好的解决：1.降低液面高度，即铺板体积减小，后期再补液。这样可以比较有效地降低影子的范围和清晰度；2.改用黑壁底透的培养板。这个是养的什么细胞啊！细胞克隆形成真好！用的什么培养基CHOK1细胞，用的是无血清培养基筛选亚克隆的，一般0.5cell/孔都可以形成这样的克隆。......你们用的培养基是CDCHO？需不需要加点生长因子之类的东西？我们用无血清培养基发现克隆生长不起来，能不能指点下

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laorentou

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展开引用xiaoheizi321laorentou蝶澈112233laorentoulaorentoutangwei6223laorentoutangwei6223laorentoutangwei6223laorentou在没有客观图像技术之前，只能靠两轮以上的有限稀释法来来保证克隆的单克隆性，这也是所说的理论上相对单克隆性。强调单克隆性其实是为了降低自己以后生产的风险，如果不是单克隆的话一个药买了几年以后就会不一样了。理论上是指0.5个细胞每孔接种96孔板然后长出的克隆，经过两轮亚克隆应该可以达到相对纯度的单克隆。其实也有一个笨方法我以前也用过的，等接种以后，可以在显微镜下观察每个96孔板的细胞个数，然后标记有一个细胞的孔。最后挑克隆的时候就挑这些标记的孔，观察的过程会很累的，可以尝试一下感觉杂交瘤细胞都是这样做法，因为杂交瘤是贴壁生长的，比较容易看清，但是CHO细胞是悬浮的，从培养箱中拿出来的时候还有可能晃动，估计辨别起来有点难度吧。一般都是培养箱中静置4个小时以后再观察的，没有条件的时候只能用显微镜观察。贴一张之前拍下来的单克隆形成过程。缺点就是有细胞影子，可能是板子反光原因。你这是用什么拍的啊？直接在显微镜下用相机拍摄的？？去年买的一台设备拍的，为了今年准备报FDA临床准备的。我觉得把这个图像数据甩到审查员面前，应该没什么话说了。相当可以，很直观啊。这个影子主要还是细胞悬浮在培养基里造成的吧？是板子的质量不好引起的折光，然后就出现影子的。有的孔就不会出现这样的情况，所以需要用好的板子。刚才关于细胞影子问题，已得到专家解释了。贴出来和大家分享一下；一般发现，在靠近孔边缘的时候，容易出现细胞影子的现象。主要的原因是：由于液面表面张力的关系，在孔边缘形成弧形液面，导致光折射及孔壁反射形成的影子。可以两种方式比较好的解决：1.降低液面高度，即铺板体积减小，后期再补液。这样可以比较有效地降低影子的范围和清晰度；2.改用黑壁底透的培养板。这个是养的什么细胞啊！细胞克隆形成真好！用的什么培养基CHOK1细胞，用的是无血清培养基筛选亚克隆的，一般0.5cell/孔都可以形成这样的克隆。你们用的培养基是CDCHO？需不需要加点生长因子之类的东西？我们用无血清培养基发现克隆生长不起来，能不能指点下......没有加生长因子的，给你个建议，先收集几种培养基然后用空白细胞株先做预实验，看看哪个培养基最适合你的单细胞生长。因为不同的细胞最适合的培养基是不一样的。

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zsbyhm2006

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jackieustc

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zsbyhm2006这个活我干过，眼睛快看瞎了以前不都这么干的么，观察时间长还不靠谱或者不观察，只是0.5稀释后，默认是单克隆。

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