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Signagen/KIAA1024 Adenovirus/Category: Ready to Package Adenovirus/
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Signagen/KIAA1024 Adenovirus/Category: Ready to Package Adenovirus/
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Product Information
Product Name: KIAA1024, cloned into our Ad
-MAX™ adenovirus expression system, ready to package.
Promoter: CMV
Storage Buffer: DMEM with 2.5% BSA, 2.5% glycerol
Turnaround Time: 5~6 weeks

Gene Information
Gene Name: KIAA1024
NCBI Acc. #: NM_015206.1
Gene Symbol: KIAA1024
Gene ID: 23251
GI Number: 54606887
Fusion Tag: No

Customized service is available with other promoters (CAG, U6, H1, UBC or Synapsin) and reporters (GFP, mRFP, Luc, LacZ, etc). Please request a quote with us.
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蚂蚁淘(www.ebiomall.cn)是中国大陆目前唯一的生物医疗科研用品B2B跨境交易平台, 该平台由多位经验丰富的生物人和IT人负责运营。蚂蚁淘B2B模式是指客户有采购意向后在蚂蚁 淘搜索全球供应信息,找到合适的产品后在蚂蚁淘下单,然后蚂蚁淘的海外买手进行跨境采购、 运输到中国口岸,最后由蚂蚁淘国内团队报关运输给客户...
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Preparation of the probe. Probes are prepared as Digoxigenin labelled RNA . The labelling mix as well as all antibodies are purchased from Boehringer All condi 查看更多>
很多实验室的研究生都要自己清洗试验用品并进行高压灭菌,这里有一份高压锅注意事项,希望对大家有用。啊?不能上传附件,那么就拷在这里吧。使用HVE-50高压蒸汽灭菌器时请先阅读此说明WARNING一.不能使用此高压蒸汽灭菌器消毒任何有破坏性材料和含碱金属成份的物质。消毒这些物品将会导致爆炸 查看更多>
北京西美杰科技有限公司在发布的西美杰代理Mirus最新高效低毒广谱转染试剂TransIT-X2™供应信息,浏览与西美杰代理Mirus最新高效低毒广谱转染试剂TransIT-X2™相关的产品或在搜索更多与西美杰代理Mirus最新高效低毒广谱转染试剂TransIT-X2™相关的内容。 查看更多>
济南思科生物科技有限公司在发布的LipoJet™转染试剂盒供应信息,浏览与LipoJet™转染试剂盒相关的产品或在搜索更多与LipoJet™转染试剂盒相关的内容。 查看更多>
上海钰博生物科技有限公司在发布的Trans-fect常见细胞系转染试剂供应信息,浏览与Trans-fect常见细胞系转染试剂相关的产品或在搜索更多与Trans-fect常见细胞系转染试剂相关的内容。 查看更多>
河南佰柯生物科技有限公司在发布的Transfection Reagent(DNA/RNA)(转染试剂)供应信息,浏览与Transfection Reagent(DNA/RNA)(转染试剂)相关的产品或在搜索更多与Transfection Reagent(DNA/RNA)(转染试剂)相关的内容。 查看更多>
脂质体介导的真核细胞转染实验的相关实验步骤、实验技巧、实验protocol、实验经验及常见问题。用脂质体将DNA导人各种真核细胞的效率比其他转染方法更高,重复性更好。 查看更多>
体内DNA转染试剂是由上海新睿生物科技有限公司代理或销售的SignaGen品牌的试剂,产品来源于美国。上海新睿生物科技有限公司是中国最权威的体内DNA转染试剂试剂销售服务商之一,在上海等地方销售体内DNA转染试剂试剂已经多年。生物在线为您提供众多企业体内DNA转染试剂仪器产品及图片,以便挑选到性价比高,合适的体内DNA转染试剂产品 查看更多>
原代细胞核酸转染仪所采用的技术是德国amaxa公司的Nucleofector™ 专利创新技术,其原理是采用独特的电场参数与细胞类型特异的转染溶液相结合的方法,直接将DNA转到细胞核内,即使是原代细胞(包括不分裂的血细胞或神经元),转染后2-4小时就能检测到转染基因的表达。转染效率高,操作简单方便。... 查看更多>
河南佰柯生物科技有限公司在发布的293T Transfection Reagent for Lentivirus Packaging(293T细胞转染试剂(慢病毒包装))供应信息,浏览与293T Transfection Reagent for Lentivirus Packaging(293T细胞转染试剂(慢病毒包装))相关的产品或在搜索更多与293T Transfection Reagent for Lentivirus Packaging(293T细胞转染试剂(慢病毒包装))相关的内容。 查看更多>
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SignaGen 是一家专注于开发和生产基因转导工具的企业,服务于生物医学研究领域。借助我们独有的技术平台(美国专利商标局号码为 072308 和 61135606),SignaGen 已经成功开发出三大类 DNA/siRNA 转染试剂,经验证我们的产品比市场上主导产品效率更高,细胞毒性更低。更重要的是我们提供一个合理的价位。 查看更多更新引用文献 more info Recent Product & Service Cit... 查看更多>
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最近在Raw264.7细胞上进行干扰和用质粒进行过表达实验,脂质体根本转不进去,后来又换了一个国产的转染试剂转染效率也很低,现在考虑用电转。
我们实验室有Lonza电转仪,有没有好一点的电转染试剂或者细胞转染试剂?

最近在做movas转染siRNA,用的是lipo2000,siRNA终浓度100nM,转染时细胞密度60%,80%,90%都尝试过,转染后6h换液,24h提RNA,效果一直不好,最好的时候沉默效率60%左右,非常崩溃
细胞转染可以:(1)真核细胞可以掺入外源DNA而获得新的遗传标志;(2)应用于转基因动植物;(3)应用于生物制药、基因治疗、RNA干扰。脂质体介导法实验原理上图所示是脂质体介导转染的示意图,它显示了外源质粒进入细胞的一般过程。外源基因进入细胞主要有四种方法:电击法、磷酸钙法和脂质体介导法和病毒介导法。电击法是在细胞上短时间暂时性的穿孔让外源质粒进入;磷酸钙法和脂质体法是利用不同的载体物质携带质粒通过直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因进入细胞;病毒法是利用包装了外源基因的病毒感染细胞的方法使得其进入细胞。但是由于电击法和磷酸钙法的实验条件控制较严、难度较大;病毒法的前期准备较复杂、而且可能对于细胞有较大影响;所以现在对于很多普通细胞系,一般的瞬时转染方法多采用脂质体法。利用脂质体转染法最重要的就是防止其毒性,因此脂质体与质粒的比例,细胞密度以及转染的时间长短和培养基中血清的含量都是影响转染效率的重要问题,通过实验摸索的合适转染条件对于效率的提高有巨大的作用。上图是本次实验采用的脂质体中阳离子组分的结构的示意图。本次实验采用的脂质体是promega公司的TransFast脂质体试剂,它是一种阳离子脂质体和中性脂质体的混合物,是对于本次实验中采用的293T细胞优化的转染试剂。
细胞转染 123
忻忻相惜4582021-08-01
对于脂质体转染与电穿孔转染都无法成功转染的细胞系建议用病毒感染,此法可以快速100%感染,检测成功率高。向左转|向右转
可以传代。
转染分2种,一种是瞬时转染,即转染后让细胞表达目的蛋白后即提取蛋白,提一次蛋白,转染一次,这种方式一般不传代;
另一种转染为稳定转染,转染后加入一定选择压力进行筛选,没有转染的细胞不能存活,只留下转染的细胞,这种情况下可以筛选单个转染细胞,构建稳定表达某一特定蛋白或基因的细胞系。
细胞转染GFP质粒并进行表达之后,一般细胞内会有大量的GFP蛋白,可以发出绿色荧光。
GFP发出绿色荧光的原理是Ca离子进入GFP的beta-barrel结构中引起的特定能级,因此只要这个结构仍然保持着,就可以发出荧光。
由于GFP的beta-barrel结构非常稳定,一些版本的GFP蛋白(如EGFP)甚至能抵抗94C的高温几分钟而不完全变性,因此想在溶液状态下去掉GFP的荧光是很难的,一般需要用光漂白法。
基于其非常稳定的结构,即便细胞被固定了,仍然会有一部分的GFP蛋白保持其构象而发出荧光。此时荧光可能较弱。在荧光显微镜下是有可能看得到的。

求助:本人现在做细胞转染,具体实验包括转染目的基因后测MTT,凋亡,侵袭等水平差异,现在有个疑惑,如果MTT结果是促进增殖,那凋亡或侵袭结果的意义是否受其影响,比如同样数量细胞里这个组的凋亡少是否其侵袭能力就强,结果是凋亡少造成的还是有协同作用,如何避免干扰,还有转染后凋亡检测时间的选择,因为不是做的药物而是转染,应如何设置时间,78小时是否有意义?问的有点多,求大家耐心指导

细胞转染可以:(1)真核细胞可以掺入外源DNA而获得新的遗传标志;(2)应用于转基因动植物;(3)应用于生物制药、基因治疗、RNA干扰。
脂质体介导法
实验原理

上图所示是脂质体介导转染的示意图,它显示了外源质粒进入细胞的一般过程。
外源基因进入细胞主要有四种方法:电击法、磷酸钙法和脂质体介导法和病毒介导法。电击法是在细胞上短时间暂时性的穿孔让外源质粒进入;磷酸钙法和脂质体法是利用不同的载体物质携带质粒通过直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因进入细胞;病毒法是利用包装了外源基因的病毒感染细胞的方法使得其进入细胞。但是由于电击法和磷酸钙法的实验条件控制较严、难度较大;病毒法的前期准备较复杂、而且可能对于细胞有较大影响;所以现在对于很多普通细胞系,一般的瞬时转染方法多采用脂质体法。
利用脂质体转染法最重要的就是防止其毒性,因此脂质体与质粒的比例,细胞密度以及转染的时间长短和培养基中血清的含量都是影响转染效率的重要问题,通过实验摸索的合适转染条件对于效率的提高有巨大的作用。

上图是本次实验采用的脂质体中阳离子组分的结构的示意图。
本次实验采用的脂质体是promega公司的TransFast脂质体试剂,它是一种阳离子脂质体和中性脂质体的混合物,是对于本次实验中采用的293T细胞优化的转染试剂。
看了一篇文献说,某某干预对SV40转染的人成纤维细胞有细胞毒性。不明白他想说明什么。#细胞生物学#

我刚开始做转染,悬浮细胞,分别做过表达和敲减,看了很多文献,大都没有提及转染后是用转染的这同一批细胞同时做pcr,wb,cck8,凋亡,细胞周期;还是说这次转染只做pcr或wb,再转染一次做cck8或细胞周期。剩下的功能试验均同前,转染一次做一次?我养的是悬浮细胞,转染后做cck8这些功能试验前需要离心换液吗?跪谢解答!

各位版友求助,

我使用Hek293构建转染模型,瞬转5质粒,用lipo2000做转染体系。

转染48h,发现荧光较强的细胞都在爬片的边缘,比例十分少。是因为我添加试剂的手法不对吗。

同时也发现加入转染体系后细胞状态特别差。想问一下用lipo2000时可以用无双抗的10%FBSDMEM吗。我转染前6h现在用的是纯DMEM,不含FBS。


请各位大神帮忙