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FormuMax/High Potency  Clophosome® - A (Anionic, 20mg/mL)/F70101C-AH
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FormuMax/High Potency Clophosome® - A (Anionic, 20mg/mL)/F70101C-AH
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liposomeexpert
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High Potency Clophosome®- Clodronate Liposomes (Anionic, 1.0 mL, 20 mg/mL)

High potency Clophosome® is created to satisfy the demand for small volume dosing of concentrated clodronate liposomes through routes that are not amendable for large volume injection, such as intratracheal or intranasal, ICV, or intra-tumor injection.

Please note this product has not been fully evaluated for any dosing approaches. Customers are strongly recommended to conduct their own studies to determine the appropriatedose regimen for their experiments.

Specifications

Product code: F70101C-AH

Brand Name: Clophosome®

Active: clodronate disodium.CAS: 22560-50-5

Clodronate disodium: 20 mg/mL

Volume: 1.0mL

clodronate-disodium.jpg

Lipid composition:phosphatidylcholine,phosphatidylglycerol,and cholesterol

Bulk solution: phosphate buffered saline (20mMsodiumphosphate, 09wt% NaCl), pH 7.0-7.5

Shelf-life: 6 monthsguaranteed for unopened vials


FormuMax科学公司位于加利福尼亚州北部硅谷的中心地带,是一家专业的药品配送公司,致力于满足医药/生物技术、化妆品和保健工业的配方开发外包的日益增长的需求。经营理念是成为**的伙伴,作为药物交付的***,特别是在制定具有挑战性的化合物脂质体和其他新的纳米技术。FormuMax拥有一支技术团队,在药物递送领域拥有***的专业知识,特别关注脂质体和其他基于脂质的技术。它们目前提供基础研究,配方可行性,定制配方准备,配方表征和分析科学的合同服务。FormuMax是**家提供大量预成型脂质体试剂的在线商店。已经成功地为来自世界各地的大学实验室、研究中心和各种行业的客户提供了服务和/或产品。 



FormuMaxScientific是一家位于加州北部硅谷中心提供脂质体给药的专业公司,以满足制药、生物技术、化妆品及营养企业日益增长的研发需求。FormuMaxScientific力求成为脂质体给药领域的领导者,特别是在配制用脂质体及其他特定纳米包埋传输的复杂药物领域。在药物传输企业,FormuMaxScientific拥有由世界*专家领衔的技术团队,并致力于脂质体及其它以磷脂为基础的先进药物传输技术。FormuMax是目前唯一一家在线提供大量预制脂质体试剂的公司,可为全球大学、研究所、研究中心及各种研发企业提供优质的药物传输试剂。同时该公司还可为基础研究、配方可行性、定制配方制备、配方鉴定及分析提供全方位技术服务。




FormuMax供应主要产品:

Clophosome-氯膦酸盐脂质体

FormuMax提供两种预埋有氯磷酸盐分子的中性脂质体产品,该产品单次静脉或腹腔注射后可在脾脏经巨噬细胞清除率可达80-90%,并具有高度活性、稳定的理化性质(长期冰箱存放后仍保持均一性及悬浮特性),粘滞度低使用简便,适用于静脉、腹腔、皮下、鼻腔、气管等多种方式给药。

Doxoves-盐酸多柔比星脂质体

FormuMax可提供脂质定制的盐酸多柔比星脂质体(定制内容为脂质成分及脂质体大小)。FormuMax提供的产品为Doxoves,具有高度的产品稳定性和一致性,紧密的粒径分布和高效的药物包埋效率(高达4.0mg/mL(40mMlipid)的包埋药物浓度)。Doxoves系列产品在产品特性、稳定性及药代动力学特性上可媲美商业产品Doxil。

DrugLoadedliposomes

FormuMax提供多款包埋活性药物的脂质体产品,包括DoxorubicinHCl(含2.0mg/mL及4.0mg/mL两种浓度),IrinotecanHCl(2.0mg/mL),TopotecanHCl(2.0mg/mL),产品线仍在持续更新中。

预制脂质体

FormuMax供应的预制脂质体产品囊括多种通用的脂质体类型,使用世界*的优质脂类原料。该系列产品易于使用,稳定性、可靠性及可重复性高,节省时间和成本,并可为研究人员提供定制脂质体服务。目前FormuMax提供聚乙二醇化/非聚乙二醇化的常用脂质体,以及含浓度梯度Ammonium的脂质体

阳离子脂质体

FormuMax供应一系列的阳离子脂质体,用于需带正电荷的脂质体或细胞转染质粒DNA、反义/干扰RNA等。

荧光脂质体

FormuMax供应预制荧光标记的脂质体,包括常规荧光脂质体、生物素化的荧光脂质体以及Avdinized化的荧光脂质体,另外还提供客户定制的荧光脂质体(脂类及染料可选)。

脂质体制备薄膜

FormuMax供应一系列不同规格的聚碳酸酯薄膜,用于脂质体挤出制备。



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蚂蚁淘(www.ebiomall.cn)是中国大陆目前唯一的生物医疗科研用品B2B跨境交易平台, 该平台由多位经验丰富的生物人和IT人负责运营。蚂蚁淘B2B模式是指客户有采购意向后在蚂蚁 淘搜索全球供应信息,找到合适的产品后在蚂蚁淘下单,然后蚂蚁淘的海外买手进行跨境采购、 运输到中国口岸,最后由蚂蚁淘国内团队报关运输给客户...
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本人为新手,希望大家能够直到一下细胞转染效率的问题。现在已知的信息如下:

质粒上面包含了萤光虫荧光素酶基因和海参荧光素酶基因,请问我通过什么方法可以测得转染效率?

如果不能测得转染效率,请问怎么优化转染条件呢?

您好,现在这个行业发展的不错,生物实验技术外包也会跟着发展,比如一些高校或者企业部分实验不想自己内部开展,或者涉及的设备比较昂贵,技术要求高,都会寻求外包。但是现在竞争也比较大,的得看单位这边整体做的怎么样。
其次要看下你选择单位的规模如何,做的比较好的,还是上海这边的,你可以看下基尔顿生物,原代细胞培养,动物造模,整体课题外包。

求助:本人现在做细胞转染,具体实验包括转染目的基因后测MTT,凋亡,侵袭等水平差异,现在有个疑惑,如果MTT结果是促进增殖,那凋亡或侵袭结果的意义是否受其影响,比如同样数量细胞里这个组的凋亡少是否其侵袭能力就强,结果是凋亡少造成的还是有协同作用,如何避免干扰,还有转染后凋亡检测时间的选择,因为不是做的药物而是转染,应如何设置时间,78小时是否有意义?问的有点多,求大家耐心指导

转化(transformation)、转导(transduction)、转染(transfection)和感染(infection)是分子生物学实 验中将外源基因导入受体细胞的4 种技术,它们词形相近,概念上容易混淆。
“转化”是指含外源基因的重组质粒(载体)将外源基因直接导入原核细胞(如细菌);
“转导”指通过重组病毒载体将外源基因导入真核细胞或原核细胞;
“转染”指重组质粒载体或游离核苷酸在脂质体等介导下进入真核细胞;
“感染”在基因转移实验中强调重组病毒载体入侵受体细胞的过程。
在使用这4 个名词时, 应仔细分析基因转移实验的四要素——转移物、载体、介导方法、受体细胞类型,而正确区 分载体和受体细胞类型是辨析的关键点。当载体是重组质粒时,如受体细胞是原核细胞应使 用“转化”,如受体细胞是真核细胞则使用“转染”;当载体是重组病毒时,如强调转移物进 入受体细胞应使用“转导”,如强调重组病毒载体进入受体细胞的过程则使用“感染”。
可以传代。
转染分2种,一种是瞬时转染,即转染后让细胞表达目的蛋白后即提取蛋白,提一次蛋白,转染一次,这种方式一般不传代;
另一种转染为稳定转染,转染后加入一定选择压力进行筛选,没有转染的细胞不能存活,只留下转染的细胞,这种情况下可以筛选单个转染细胞,构建稳定表达某一特定蛋白或基因的细胞系。
个人经验,BHK、CHO是很常用的转染用细胞,而且跟抗体非特异性反应也不高。一般来说,大多数可传代细胞的转染效率都是可以的,还要考虑所用转染剂的类型。

不建议你用MDCK细胞,非常难转染。
细胞转染 实验方法 123
一直攀爬的蜗牛2021-07-31
本人最近正在做质粒DNA的293T细胞转染,请问各位大神,有没有用过sigma的转染试剂,我们实验室买了,但是是凝胶状,不知道怎么用,请指教!
细胞转染可以:(1)真核细胞可以掺入外源DNA而获得新的遗传标志;(2)应用于转基因动植物;(3)应用于生物制药、基因治疗、RNA干扰。
脂质体介导法
实验原理

上图所示是脂质体介导转染的示意图,它显示了外源质粒进入细胞的一般过程。
外源基因进入细胞主要有四种方法:电击法、磷酸钙法和脂质体介导法和病毒介导法。电击法是在细胞上短时间暂时性的穿孔让外源质粒进入;磷酸钙法和脂质体法是利用不同的载体物质携带质粒通过直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因进入细胞;病毒法是利用包装了外源基因的病毒感染细胞的方法使得其进入细胞。但是由于电击法和磷酸钙法的实验条件控制较严、难度较大;病毒法的前期准备较复杂、而且可能对于细胞有较大影响;所以现在对于很多普通细胞系,一般的瞬时转染方法多采用脂质体法。
利用脂质体转染法最重要的就是防止其毒性,因此脂质体与质粒的比例,细胞密度以及转染的时间长短和培养基中血清的含量都是影响转染效率的重要问题,通过实验摸索的合适转染条件对于效率的提高有巨大的作用。

上图是本次实验采用的脂质体中阳离子组分的结构的示意图。
本次实验采用的脂质体是promega公司的TransFast脂质体试剂,它是一种阳离子脂质体和中性脂质体的混合物,是对于本次实验中采用的293T细胞优化的转染试剂。
传统的转染试剂有一定的细胞毒性,在转染过程由于提高细胞的通透性因而不能在培养基中添加抗生素。如,阳离子脂质体。带正电的脂质体与核酸带负电的 磷酸基团 形成复合物被细胞内吞。血清中含有大量的蛋白质,在转染过程中,带负电的蛋白质可能干扰阳离子脂质体对核酸的吸附,影响转染效率。另外,使用脂质体等转染 试剂时,由于含血清转染会将血清中的蛋白带入细胞,引发细胞毒性,导致转染效率降低,故不能有血清转染。这些转染试剂要求在转染前换无血清培养基,转染后 4-6h在更换成有血清培养基,这其实是为了减轻转染造成的细胞毒性。
看了一篇文献说,某某干预对SV40转染的人成纤维细胞有细胞毒性。不明白他想说明什么。#细胞生物学#
细胞 (英文名:cell)并没有统一的定义,比较普遍的提法是:细胞是生物体基本的结构和功能单位。已知除病毒之外的所有生物均由细胞所组成,但病毒生命活动也必须在细胞中才能体现。一般来说,细菌等绝大部分微生物以及原生动物由一个细胞组成,即单细胞生物,高等植物与高等动物则是多细胞生物。细胞可分为原核细胞、真核细胞两类,但也有人提出应分为三类,即把原属于原核细胞的古核细胞独立出来作为与之并列的一类。研究细胞的学科称为细胞生物学。细胞体形极微,在显微镜下始能窥见,形状多种多样。主要由细胞核与细胞质构成,表面有细胞膜。高等植物细胞膜外有细胞壁,细胞质中常有质体,体内有叶绿体和液泡,还有线粒体。
请教做过DNA 脂质体法转染细胞的高手
DXY721认为:
悬浮细胞和贴壁细胞在转染过程中差别不大,主要差别在于转染后的筛选,当然如果你做的是瞬时转染就不存在筛选的问题了。
其实转染的过程很简单,问题是能不能转的进去的,转染率能有多少,转进去是否可以稳定表达目的蛋白等等。
我们也是用脂质体做悬浮细胞的转染,说明书上都有具体的操作过程,将脂质体和目的基因按比例混合,然后加到细胞悬液里就OK了,说的简单,实际上还是有一些细节要注意的,比如脂质体和目的基因混合的比例,转染的细胞数,细胞的代数,细胞的状态,有的还要求在转染的前一天传代一次,不过不要怕,这些在脂质体说明书上都有明确的说明,按照说明书做就可以了。
jinghuanlv认为:
悬浮细胞和贴壁细胞转染还是有很大不同的。
脂质体转染的原理基于电荷吸引原理,先形成脂质体-DNA复合物,散布在细胞周围,然后通过细胞的内吞作用,将目的基因导入细胞内,而脂质体复合物与贴壁细胞的接触机会比悬浮细胞高出很多倍,所以,脂质体转染时悬浮细胞的转染效率要明显低于贴壁细胞。
我们实验室转染悬浮细胞是用的电穿孔法,目前为止,悬浮细胞转染的最好方法还是电转,我们实验室用的电转仪是Bio-Rad的,使用条件是电压250V,电容975uF,效果不错,不妨一用。