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| Product Name | Phytochelatin 2, PC2(γE - C)2 - G |
| Size | 1 mg |
| Catalog # | AS-60791 |
| US$ | $131 |
| Purity | % Peak Area By HPLC ≥ 95% |
A glutathione-derived heavy metal-detoxifying peptide of higher plants consisting of 2 units of γGlu-Cys. | |
| Detailed Information |  Datasheet Material Safety Data Sheets (MSDS) |
| Storage | -20°C |
| References | Grill, E. et al. Science 230, 674 (1985); Rauser, WE. Plant Physiol. 109, 1141 (1995). |
| Molecular Weight | 539.6 |
| (γE-C)2-G | |
| Sequence(Three-Letter Code) | H - γ - Glu - Cys - γ - Glu - Cys - Gly - OH |
| Product Citations | Mohan, T. et al. (2016).Cytokinin Determines Thiol-Mediated Arsenic Tolerance and Accumulation.ASPGDOI: https://doi.org/10.1104/pp.16.00372Dresler, S. et al. (2014). Effect of cadmium on selected physiological and morphological parameters in metallicolous and non-metallicolous populations of Echium vulgare . Ecotoxicol Environ Safety 104, 332. doi: 10.1016/j.ecoenv.2014.03.019.Fischer, S. et al. (2014). Analysis of plant Pb tolerance at realistic submicromolar concentrations demonstrates the role of phytochelatin synthesis for Pb detoxification. Environ Sci Technol 48, 7552. doi: 10.1021/es405234p.Ke, C-Y. et al. (2014). Understanding of thiol-induced etching of luminescent gold nanoclusters. RSC Adv 4, 26050. doi: 10.1039/C4RA02111H. Song, W-Y. et al. (2014). Phytochelatinmetal (loid) transport into vacuoles shows different substrate preferences in barley and Arabidopsis. Plant Cell Environ 37, 1192.Spisso, AA. et al. (2014). Characterization of Hg-phytochelatins complexes in vines (Vitis vinifera cv Malbec) as defense mechanism against metal stress.BioMetals 27, 591.Abboud, P. and KJ. Wilkinson. (2013). Role of metal mixtures (Ca, Cu and Pb) on Cd bioaccumulation and phytochelatin production by Chlamydomonas reinhardtii. Environ Pollution 179, 33. doi:10.1016/j.envpol.2013.03.047Gupton‐Campolongo, T. et al. (2013). Characterization of a high affinity phytochelatin synthase from the Cd‐utilizing marine diatom Thalassiosira pseudonana. J Phycol 49, 32. doi: 10.1111/jpy.12022.Matsuura, H. et al. (2013). Development of surface‐engineered yeast cells displaying phytochelatin synthase and their application to cadmium biosensors by the combined use of pyrene‐excimer fluorescence. Biotechnol Progress 29, 1197. doi: 10.1002/btpr.1789.Miszczak, A. et al. (2013). SEC ICP MS and CZE ICP MS investigation of medium and high molecular weight complexes formed by cadmium ions with phytochelatins. Anal Bioanal Chem 405, 4667. doi: 10.1007/s00216-013-6868-3.Rigouin, C. et al. (2013). Characterization of the phytochelatin synthase from the human parasitic nematode Ancylostoma ceylanicum.Mol Biochem Parasitol 191, 1. doi: 10.1016/j.molbiopara.2013.07.003.Akhter, MF. et al. (2012). Reduced translocation of cadmium from roots is associated with increased production of phytochelatins and their precursors. J Plant Physiol 169, 1821. doi: 10.1016/j.plaphy.2011.10.007.Fernández, R. et al. (2012). Lead accumulation and synthesis of non-protein thiolic peptides in selected clones of Melilotus alba and Melilotus officinalis. Environ Exp Botany 78, 18. doi: 10.1016/j.envexpbot.2011.12.016.Heikal, L. et al. (2011). S-nitrosophytochelatins: investigation of the bioactivity of an oligopeptide nitric oxide delivery system. Biomacromol 12 2103. doi: 10.1021/bm200159h.Lavoie, M. et al. (2012). The influence of pH on algal cell membrane permeability and its implications for the uptake of lipophilic metal complexes. J Phycol 48, 293. doi: 10.1111/j.1529-8817.2012.01126.xSantini, O., et al. (2012). Phytochelatins in the freshwater bivalve Anodonta cygnea." Effects of copper on calcium metabolism and detoxification mechanisms in freshwater bivalve species of Anodonta: 108.Shen, C-C. et al. (2012). Selective extraction of thiol-containing peptides in seawater using Tween 20-capped gold nanoparticles followed by capillary electrophoresis with laser-induced fluorescence. J Chromatogr A 1220, 162. doi: 10.1016/j.chroma.2011.11.057.Wu, Y. and W-X. Wang. (2012). Thiol compounds induction kinetics in marine phytoplankton during and after mercury exposure. J Haz Mat 217, 271. doi: 10.1016/j.jhazmat.2012.03.024.Zeng, X-W. et al. (2011). Effects of Zn on plant tolerance and non-protein thiol accumulation in Zn hyperaccumulator Arabis paniculata Franch. Environ Exp Botany 70, 227. doi: 10.1016/j.envexpbot.2010.09.009.Elviri, L. et al. (2010). Identification of in vivo nitrosylated phytochelatins in Arabidopsis thaliana cells by liquid chromatography-direct electrospray-linear ion trap-mass spectrometry. J Chromatog 1217, 4120.Li, Y. et al. (2010). Controlled Nitric Oxide Delivery Platform Based on S-Nitrosothiol Conjugated Interpolymer Complexes for Diabetic Wound Healing. Mol Pharmaceutics 7, 254.Wang, M-J. and W-X. Wang. (2009). Cadmium in three marine phytoplankton: accumulation, subcellular fate and thiol induction. Aquatic Toxicol 95, 99. doi: 10.1016/j.aquatox.2009.08.006.Andra, SS. et al. (2009). Analysis of phytochelatin complexes in the lead tolerant vetiver grass [Vetiveria zizanioides (L.)] using liquid chromatography and mass spectrometry. Environ. Pollut. 157, 2173.Heikal, L. et al. (2008). Characterisation of the decomposition behaviour of S-nitrosoglutathione and a new class of analogues: S-Nitrosophytochelatins. Nitric Oxide 20, 157.Mendoza-Cozatl, DG. et al. (2008). Identification of high levels of phytochelatins, glutathione and cadmium in the phloem sap of Brassica napus. A role for thiol-peptides in the long-distance transport of cadmium and the effect of cadmium on iron translocation. Plant J. 54, 249.Minocha, R. et al. (2008). Separation and quantification of monothiols and phytochelatins from a wide variety of cell cultures and tissues of trees and other plants using high performance liquid chromatography. J. Chromatogr. A 1207, 72.Zeng, X. et al. (2008). Responses of non-protein thiols to Cd exposure in Cd hyperaccumulator Arabis paniculata Franch. Environ. Exp. Botany 66, 242.Miao, AJ. & WX. Wang (2007). Predicting copper toxicity with its intracellular or subcellular concentration and the thiol synthesis in a marine diatom. Environ. Sci. Technol. 41, 1777.Thangavel, P. et al. (2007). Changes in phytochelatins and their biosynthetic intermediates in red spruce (Picea rubens Sarg.) cell suspension cultures under cadmium and zinc stress. Plant Cell. Tiss. Organ Cult 88, 201. |
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2018-08-10
通过标本制备和观察了解生物体细胞的无丝分裂、有丝分裂形态特征及生殖细胞的减数分裂过程。 查看更多
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2021-09-22
一、仪器简介: DYJ-615金相显微镜配有落射照明系统、大视野目镜，成像清晰、衬度好，同时配有偏光装置，金相显微镜适宜于微小颗粒或薄片状试样的检测，以及需要在特定一定范围内目标的试样研究和分析。因此，金相显微镜既可用于鉴别分析各种金属及合金材料又可以分析非金属物质的组织结构，还适用于各类电子加工铸造业用于观察透光和不透光的物质， 如金属、陶瓷、集成块、印... 查看更多
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2017-11-04
OMT60像质好、分辨率高、景深大，视场宽，清晰范围广,超长工作距离，操作方便舒适. 欧米特OMT60提供优质的光学系统和耐用可靠的操作机构。欧米特OMT60齐全的附件，多样化的组合配置，满足现代生物、医学、科研、现代电子工业的在线检测,绝对可以称得上显微镜的战斗机！性价比之王！■ 光学部件镀有特殊膜层，视场中形成清晰明亮且平坦的图像■ 换档变倍物镜组合2X/4X、1X/2X、1X/3X供选择■ 标准放大倍率20X/40X，选配辅助物镜 查看更多
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2016-12-15
一、用途功能 DYF-600落射荧光显微镜具有透反射双光源。可用于荧光观察和透射明视场观察.采用无放大率色差的无限远平场消色差荧光物镜和大视野目镜,成像清晰的无限远光学系统、视野广阔,明亮。采用人机工程学要求的机身设计，让研究人员在操作过程中更加轻松与舒适。是生物学、细胞学、肿瘤学、遗传学、免疫学等研究工作的先进显微设备。荧光显微镜广泛应用于科学研究、高分... 查看更多
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2016-12-15
一、仪器用途 生物显微镜广泛用于遗传学、生物学、细菌学、组织学、药物化学等领域，在生物实验室中可谓是必备的实验仪器。采用人工照明，亮度连续可调照明系统，360度自由转动的双目镜筒。适用于卫生机构、实验室、研究机构等单位作生物学、细菌学观察、教学和专业研究、临床实验常规之用。本显微镜可选配相衬、暗场、偏光等装置实现更多的观察方式。配备各种不同的配件，可以... 查看更多
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2018-12-26
Procedure IIIUsed by Denise Hardy, ARUP Laboratories, Salt Lake City, UT. Pre-fix < 2 mm specimens in fixative, room temperature, 1 hour. Microwave in reage 查看更多
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2018-12-26
显微操作技术（micromanipulation technique）是指在高倍复式显微镜下，利用显微操作器（micromanipulator）进行细胞或早期胚胎操作的一种方法。显微操作器是用以控制显微注射针在显微镜视野内移动的机械装置。显微操作的基础平台--倒置研究级显微镜（例如OLYMPUS的IX71/81）各种 查看更多
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2021-07-22
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2021-07-19
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2016-12-15
一、仪器介绍；DYS-338倒置生物显微镜配置长工作距离平场消色差物镜、大视野目镜。结构紧凑，设计合理，使观察者可以非常舒适的操作仪器。产品适合于对培养中的活细胞及组织直接做显微观察；高校及研究机构常用于微生物、细胞、细菌、组织培养、悬浮体、沉淀物的观察，可连续观察细胞、细菌等在培养液中裂变的过程，并可通过成像系统拍摄照片或者视频。在细胞学、寄生虫学、肿瘤... 查看更多
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2018-02-26
为了支持广大客户的实验，西安艾丽娜生物科技有限公司推出赠试验片和免费扫描数字图像的活动，欢迎新老客户选购。一、购买80点以上的组织芯片（含80点），赠送同款预试验片，还赠送H&E高分辨显微镜扫描图像。二、常见器官组织芯片八折优惠（不含24点），特殊种类组织芯片九折优惠。三、组织大片和组织蜡块均八折优惠。四、定制实验的客户，赠送预试验片，赠送H&E高清数字图像，并免费扫描实验结果，提供数字式高分辨显微镜扫描图像，自己可... 查看更多
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2017-09-22
索尼与奥林巴斯联手卖手术显微镜，两个德国巨头几乎垄断了这个市场 查看更多
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GST pulldown Protocol_文档下载123
2017-12-03
看不到病毒的。
解释如下：
因为病毒很小。多数单个病毒粒子的直径在100nm左右，也就是说，把10万个左右的病毒粒子排列起来才可能用肉眼勉强看得到。
病毒如此细小，绝大多数病毒必须借助电子显微镜才能观察，电子显微镜的分辨率是光学显微镜的1000倍。不同病毒间大小差异很大。最小的如植物的联体病毒（Geminiviruses）直径仅18-20nm，最大的动物痘病毒（Poxviruses）大小达300-450nm×170-260nm，最长的如丝状病毒科（Filoviridae）病毒粒子大小为80nm×790-14000nm。
光学显微镜的分辨距离为d=0.61λ/NA 式中
d——物镜的分辨距离，单位 nm。
λ——照明光线波长，单位 nm。
NA ——物镜的数值孔径
例如油浸物镜的数值孔径为1.25，可见光波长范围为400—700nm ，取其平均波长550 nm，则d=270 nm，约等于照明光线波长一半。一般地，用可见光照明的显微镜分辨力的极限是0.2μm也就是200nm，大于病毒的直径，因此用光学显微镜是看不到病毒的。
细菌就比病毒大得多，单个球菌的直径约在0.8～1.2μm左右，大多数杆菌中等大小长2～5μm，宽0.3～1μm，在光学显微镜的可观测范围内。
解释如下：
因为病毒很小。多数单个病毒粒子的直径在100nm左右，也就是说，把10万个左右的病毒粒子排列起来才可能用肉眼勉强看得到。
病毒如此细小，绝大多数病毒必须借助电子显微镜才能观察，电子显微镜的分辨率是光学显微镜的1000倍。不同病毒间大小差异很大。最小的如植物的联体病毒（Geminiviruses）直径仅18-20nm，最大的动物痘病毒（Poxviruses）大小达300-450nm×170-260nm，最长的如丝状病毒科（Filoviridae）病毒粒子大小为80nm×790-14000nm。
光学显微镜的分辨距离为d=0.61λ/NA 式中
d——物镜的分辨距离，单位 nm。
λ——照明光线波长，单位 nm。
NA ——物镜的数值孔径
例如油浸物镜的数值孔径为1.25，可见光波长范围为400—700nm ，取其平均波长550 nm，则d=270 nm，约等于照明光线波长一半。一般地，用可见光照明的显微镜分辨力的极限是0.2μm也就是200nm，大于病毒的直径，因此用光学显微镜是看不到病毒的。
细菌就比病毒大得多，单个球菌的直径约在0.8～1.2μm左右，大多数杆菌中等大小长2～5μm，宽0.3～1μm，在光学显微镜的可观测范围内。
光学显微镜的原理_123
夜很静晚很安2017-11-06
显微镜是由一个透镜或几个透镜的组合构成的一种光学仪器，是人类进入原子时代的标志。主要用于放大微小物体成为人的肉眼所能看到的仪器。显微镜分光学显微镜和电子显微镜：光学显微镜是在1590年由荷兰的詹森父子所首创。现在的光学显微镜可把物体放大1600倍，分辨的最小极限达0.1微米，国内显微镜机械筒长度一般是160mm。
成像原理：
光学显微镜
光学显微镜主要由目镜、物镜、载物台和反光镜组成。目镜和物镜都是凸透镜，焦距不同。物镜的凸透镜焦距小于目镜的凸透镜的焦距。物镜相当于投影仪的镜头，物体通过物镜成倒立、放大的实像。目镜相当于普通的放大镜，该实像又通过目镜成正立、放大的虚像。经显微镜到人眼的物体都成倒立放大的虚像。反光镜用来反射，照亮被观察的物体。反光镜一般有两个反射面：一个是平面镜，在光线较强时使用；一个是凹面镜，在光线较弱时使用，可会聚光线。
电子显微镜
电子显微镜是根据电子光学原理，用电子束和电子透镜代替光束和光学透镜，使物质的细微结构在非常高的放大倍数下成像的仪器。
电子显微镜的分辨能力以它所能分辨的相邻两点的最小间距来表示。20世纪70年代，透射式电子显微镜的分辨率约为0.3纳米(人眼的分辨本领约为0.1毫米)。现在电子显微镜最大放大倍率超过300万倍，而光学显微镜的最大放大倍率约为2000倍，所以通过电子显微镜就能直接观察到某些重金属的原子和晶体中排列整齐的原子点阵。
详见百度百科：http://baike.baidu.com/view/2921.htm
成像原理：
光学显微镜
光学显微镜主要由目镜、物镜、载物台和反光镜组成。目镜和物镜都是凸透镜，焦距不同。物镜的凸透镜焦距小于目镜的凸透镜的焦距。物镜相当于投影仪的镜头，物体通过物镜成倒立、放大的实像。目镜相当于普通的放大镜，该实像又通过目镜成正立、放大的虚像。经显微镜到人眼的物体都成倒立放大的虚像。反光镜用来反射，照亮被观察的物体。反光镜一般有两个反射面：一个是平面镜，在光线较强时使用；一个是凹面镜，在光线较弱时使用，可会聚光线。
电子显微镜
电子显微镜是根据电子光学原理，用电子束和电子透镜代替光束和光学透镜，使物质的细微结构在非常高的放大倍数下成像的仪器。
电子显微镜的分辨能力以它所能分辨的相邻两点的最小间距来表示。20世纪70年代，透射式电子显微镜的分辨率约为0.3纳米(人眼的分辨本领约为0.1毫米)。现在电子显微镜最大放大倍率超过300万倍，而光学显微镜的最大放大倍率约为2000倍，所以通过电子显微镜就能直接观察到某些重金属的原子和晶体中排列整齐的原子点阵。
详见百度百科：http://baike.baidu.com/view/2921.htm
荧光显微镜(荧光显微镜照片的merge方法)读后感大全123
wxxjiang2021-08-04
由于没有没有共聚焦，染核和胞浆的荧光显微镜图片，有什么软件可以把这两个图叠加？
【求助】丙肝IgG测定Autolumo A2000 全自动化学发光测定仪 临床...123
糖葫芦他爹2021-07-27
激光扫描共聚焦显微镜（LSCM）是近年来迅速发展起来的一种新型高精度显微镜,不仅用于观察经固定的各种细胞和组织结构,而且还可对活细胞的形态、结构,离子的实时动态等进行观察和定量荧光测定,以及定量图像分析。目前国内LSCM技术应用前景广泛，并且发表众多具影响力的文章。为了推动LSCM技术的创新发展、促进相关人员技术的提升，我们特此制定激光共聚焦显微镜高级应用培训，面向生物医药领域从事成像技术方法创新的科研人员和成像平台管理者，充分发挥现有成像设备的作用，通过理论加实践的系统学习，最大限度地掌握该技术的使用方法，独立判断与排除科研常见问题和障碍。
2017年8月26日星期六
08:30-08:45报道
08:45-08:50欢迎致辞
08:50-09:05清华大学细胞影像中心介绍
09:05-09:45光学显微镜的选择和如何拍出高质量共聚焦图像王文娟
09:45-10:15休息与讨论
10:15-11:00多色影响与荧光光谱扫描及线性分析孙悦
11:00-11:45荧光漂白后恢复(FRAP)冯倩倩
11:50-13:30午餐
13:30-16:30上机操作培训(根据情况进行分组操作)
8:30-8:45学习内容回顾与总结
2017年8月27日星期日
09:00-09:15培训回顾
09:15-10:00荧光共振能量转移(FRET)王瑾瑜
10:00-10:45转盘共聚焦显微镜成像张彦丽
10:40-11:00休息与讨论
11:00-11:50图像处理基础与荧光共定位分析王文娟
11:50-13:30午餐
13:30-16:30上机操作培训(根据情况进行分组操作)
8:30-8:45学习内容回顾与总结
2017年8月28日星期一
09:00-09:30培训回顾与总结
09:30-10:00培训测验
10:00-10:30颁发证书
10:30-10:40合影
清华大学细胞影像中心是在生命学科校级平台（清华大学生物医学测试中心、清华大学蛋白质研究技术中心）范围内、跨中心、多平台联合组建的虚体技术中心，简称细胞影像中心。中心包括的平台有：生物医学测试中心细胞生物学平台光学显微镜机组、共享仪器平台光学显微镜机组、尼康生物影像中心、蛋白质研究技术中心细胞影像平台。细胞影像中心作为一个综合型光学成像平台，以科研服务为宗旨，主要提供细胞生物学影像及分析测试服务。包含的仪器有：激光扫描共聚焦(Confocal：Zeiss、Nikon、Leica、Olympus)、转盘共聚焦(SpinningDiskConfocal)、激光显微切割、双光子显微镜、超高分辨SIM/STORM/STED、全内反射（TIRF）荧光显微镜、荧光寿命成像-荧光相关光谱系统（FCS/FLIM）、高分辨活细胞成像系统、活细胞工作站、全自动数字玻片扫描系统和图像处理工作站（软件有Imaris,Image-ProPremier/Plus,Huygens,AutoQuant,MetaMorph和NIS-Elements等）,为实验提供一站式的解决方案。
转盘共聚焦显微镜拍摄，发表于Eph/ephrinsignalingmaintainstheboundaryofdorsalforerunnercellclusterduringmorphogenesisofthezebrafishembryonicleft-right
使用Nikon超分辨率显微镜拍摄，N-SIM显微镜显示NRK细胞稳定的表达线粒体标记20-GFP。标尺，1μm。WangC,DuW,YuLi*,etal.Dynamictubulationofmitochondriadrivesmitochondrialnetworkformation[J].Cellresearch,2015,25(10):1108.
使用ZeissLSM710激光共聚焦显微镜拍摄，图为人眼晶状体祖细胞中的晶状体球蛋白聚集体。绿色：绿色荧光蛋白和晶状体球蛋白融合蛋白；红色：P62蛋白；蓝色：细胞核；标尺：10μm。发表于Lanosterolreversesproteinaggregationincataracts.Nature,2015(523),607-611
使用ZeissLSM780激光共聚焦显微镜拍摄，图为酿酒酵母十二号染色体的设计与合成。发表于ZhangW,ZhaoG,LuoZ,etal.EngineeringtheribosomalDNAinamegabasesyntheticchromosome.[J].
王文娟博士清华大学细胞影像中心主任，高级工程师。毕业于北京大学，美国纽约大学医学中心博士后，主要从事光学显微成像和图像处理技术。技术专长：1.光学显微镜技术用于生物医学的研究，包括激光共聚焦、超高分辨、全内反射和荧光寿命成像等技术。2.单分子成像光学仪器搭建与单分子荧光成像3.图像处理、展示和数据分析。
冯倩倩共享仪器平台主管，工程师。技术专长：激光共聚焦显微镜影像技术
孙悦共享仪器平台主管，工程师。技术专长：激光共聚焦显微镜、全自动数字玻片扫描和双光子成像技术
王瑾瑜尼康生物影像中心负责人，工程师。技术专长：光诱导蛋白相关技术(FRET、FRAP、PA-GFP等)和超高分辨率技术
张彦丽张彦丽，工程师。技术专长：转盘共聚焦成像、双光子成像
培训时间：2017年8月26日-28日
报到时间：2017年8月25日12:00-18:002017年8月26日08:00-08:45
培训地点：清华大学生物技术馆会议室
报名费用：
单人：3000元/人
两人：2400元/人
三人及以上：2000元/人
(含注册费、培训费、资料费、茶歇费、午餐费)主办方可协助学员预定住宿(费用自理，需提前一周预定)
报名截止时间：8月20日
在线报名链接：http://www.damor.cn/app/wap-activity/sign-up/index.html
请问多少倍的显微镜才可以看到分子？必须说出多少倍_123
2021-07-21
德国学者宾尼格和瑞士学者罗雷尔于1982年制造成功的“扫描隧道显微镜”，放大倍数可达3亿倍。
普通光学显微镜通过提高和改善透镜的性能，使放大率达到1000—1500倍左右，但一直末超过2000倍。这是由于普通光学显微镜的放大能力受光的波长的限制。光学显微镜是利用光线来看物体，为了看到物体，物体的尺寸就必须大于光的波长，否则光就会 “绕”过去。理论研究结果表明，普通光学显微镜的分辨本领不超过0。02微米，有人采用波长比可见光更短的紫外线，放大能力也不过再提高一倍左右。
要想看到组成物质的最小单位——原子，光学显微镜的分辨本领还差3—4个量级。为了从更高的层次上研究物质的结构，必须另辟蹊径，创造出功能更强的显微镜。
有人设想用波长比紫外线更短的X射线的透镜。
20世纪20年代法国科学家德布罗意发现电子流也具有波动性，其波长与能量有确定关系，能量越大波长越短，比如电子学1000伏特的电场加速后其波长是0.388埃，用10万伏电场加速后波长只有0.0387埃，于是科学家们就想到是否可以用电子束来代替光波？这是电子显微镜即将诞生的一个先兆。
用电子束来制造显微镜，关键是找到能使电子束聚焦的透镜，光学透镜是无法会聚电子束的。
1926年，德国科学家蒲许提出了关于电子在磁场中运动的理论。他指出： “具有轴对称性的磁场对电子束来说起着透镜的作用。”这样，蒲许就从理论上解决了电子显微镜的透镜问题，因为电子束来说，磁场显示出透镜的作用，所以称为 “磁透镜”。
德国柏林工科大学的年轻研究员卢斯卡，1932年制作了第一台电子显微镜——它是一台经过改进的阴极射线示波器，成功地得到了铜网的放大像——第一次由电子束形成的图像，加速电压为7万，最初放大率仅为12倍。尽管放大率微不足道，但它却证实了使用电子束和电子透镜可形成与光学像相同的电子像。
经过不断地改进，1933年卢斯卡制成了二级放大的电子显微镜，获得了金属箔和纤维的1万倍的放大像。
1937年应西门子公司的邀请，卢斯理建立了超显微镜学实验室。1939年西门子公司制造出分辨本领达到30埃的世界上最早的实用电子显微镜，并投入批量生产。
电子显微镜的出现使人类的洞察能力提高了好几百倍，不仅看到了病毒，而且看见了一些大分子，即使经过特殊制备的某些类型材料样品里的原子，也能够被看到。
但是，受电子显微镜本身的设计原理和现代加工技术手段的限制，目前它的分辨本领已经接近极限。要进一步研究比原子尺度更小的微观世界必须要有概念和原理上的根本突破。
1978年，一种新的物理探测系统—— “扫描隧道显微镜已被德国学者宾尼格和瑞士学者罗雷尔系统地论证了，并于1982年制造成功。这种新型的显微镜，放大倍数可达3亿倍，最小可分辨的两点距离为原子直径的1/10，也就是说它的分辨率高达0.1埃。
扫描隧道显微镜采用了全新的工作原理，它利用一种电子隧道现象，将样品本身作为一具电极，另一个电极是一根非常尖锐的探针，把探针移近样品，并在两者之间加上电压，当探针和样品表面相距只有数十埃时，由于隧道效应在探针与样品表面之间就会产生隧穿电流，并保持不变，若表面有微小起伏，那怕只有原子大小的起伏，也将使穿电流发生成千上万倍的变化，这种携带原子结构的信息，输入电子计算机，经过处理即可在荧光屏上显示出一幅物体的三维图象。
鉴于卢斯卡发明电子显微镜的，宾尼格、罗雷尔设计制造扫描隧道显微镜的业绩，瑞典皇家科学院决定，将1986年诺贝尔物理奖授予他们三人。
普通光学显微镜通过提高和改善透镜的性能，使放大率达到1000—1500倍左右，但一直末超过2000倍。这是由于普通光学显微镜的放大能力受光的波长的限制。光学显微镜是利用光线来看物体，为了看到物体，物体的尺寸就必须大于光的波长，否则光就会 “绕”过去。理论研究结果表明，普通光学显微镜的分辨本领不超过0。02微米，有人采用波长比可见光更短的紫外线，放大能力也不过再提高一倍左右。
要想看到组成物质的最小单位——原子，光学显微镜的分辨本领还差3—4个量级。为了从更高的层次上研究物质的结构，必须另辟蹊径，创造出功能更强的显微镜。
有人设想用波长比紫外线更短的X射线的透镜。
20世纪20年代法国科学家德布罗意发现电子流也具有波动性，其波长与能量有确定关系，能量越大波长越短，比如电子学1000伏特的电场加速后其波长是0.388埃，用10万伏电场加速后波长只有0.0387埃，于是科学家们就想到是否可以用电子束来代替光波？这是电子显微镜即将诞生的一个先兆。
用电子束来制造显微镜，关键是找到能使电子束聚焦的透镜，光学透镜是无法会聚电子束的。
1926年，德国科学家蒲许提出了关于电子在磁场中运动的理论。他指出： “具有轴对称性的磁场对电子束来说起着透镜的作用。”这样，蒲许就从理论上解决了电子显微镜的透镜问题，因为电子束来说，磁场显示出透镜的作用，所以称为 “磁透镜”。
德国柏林工科大学的年轻研究员卢斯卡，1932年制作了第一台电子显微镜——它是一台经过改进的阴极射线示波器，成功地得到了铜网的放大像——第一次由电子束形成的图像，加速电压为7万，最初放大率仅为12倍。尽管放大率微不足道，但它却证实了使用电子束和电子透镜可形成与光学像相同的电子像。
经过不断地改进，1933年卢斯卡制成了二级放大的电子显微镜，获得了金属箔和纤维的1万倍的放大像。
1937年应西门子公司的邀请，卢斯理建立了超显微镜学实验室。1939年西门子公司制造出分辨本领达到30埃的世界上最早的实用电子显微镜，并投入批量生产。
电子显微镜的出现使人类的洞察能力提高了好几百倍，不仅看到了病毒，而且看见了一些大分子，即使经过特殊制备的某些类型材料样品里的原子，也能够被看到。
但是，受电子显微镜本身的设计原理和现代加工技术手段的限制，目前它的分辨本领已经接近极限。要进一步研究比原子尺度更小的微观世界必须要有概念和原理上的根本突破。
1978年，一种新的物理探测系统—— “扫描隧道显微镜已被德国学者宾尼格和瑞士学者罗雷尔系统地论证了，并于1982年制造成功。这种新型的显微镜，放大倍数可达3亿倍，最小可分辨的两点距离为原子直径的1/10，也就是说它的分辨率高达0.1埃。
扫描隧道显微镜采用了全新的工作原理，它利用一种电子隧道现象，将样品本身作为一具电极，另一个电极是一根非常尖锐的探针，把探针移近样品，并在两者之间加上电压，当探针和样品表面相距只有数十埃时，由于隧道效应在探针与样品表面之间就会产生隧穿电流，并保持不变，若表面有微小起伏，那怕只有原子大小的起伏，也将使穿电流发生成千上万倍的变化，这种携带原子结构的信息，输入电子计算机，经过处理即可在荧光屏上显示出一幅物体的三维图象。
鉴于卢斯卡发明电子显微镜的，宾尼格、罗雷尔设计制造扫描隧道显微镜的业绩，瑞典皇家科学院决定，将1986年诺贝尔物理奖授予他们三人。
视频显微镜的使用步骤有哪些？_合肥博艺仪器设备有限公司123
粉鼓2017-11-08
视频显微镜也叫做数码显微镜也是光学仪器的一款类型，它是将显微镜看到的实物图像通过数模转换，使其成像在显微镜自带的屏幕上或计算机上。它的立体感强，成像清晰和宽阔，又具有长工作距离，并是适用范围非常广泛的常规显微镜。今天显微镜小编就为大家讲解一下它的使用步骤教会大家使用视频显微镜。
1，先把视频显微镜的几个大的零件准备好，先把万向支架组装起来，在这里要注意镜头和相机的支架应该在下面，支持显示器的支架要放到上面，这样便于观察。
2，把镜头安装在万向支架上面，安装到有一个圈的里面，正好固定镜头，镜头是比较脆弱的，所以安装的时候千万要小心，然后再把相机安装到镜头的上面，哪里有接口直径插上就可以了，这一步是很重要的，千万小小心。
3，支架和镜头安装好以后然后把显示器固定好，固定好以后，再把一些链接线连上这样就可以了。
1，先把视频显微镜的几个大的零件准备好，先把万向支架组装起来，在这里要注意镜头和相机的支架应该在下面，支持显示器的支架要放到上面，这样便于观察。
2，把镜头安装在万向支架上面，安装到有一个圈的里面，正好固定镜头，镜头是比较脆弱的，所以安装的时候千万要小心，然后再把相机安装到镜头的上面，哪里有接口直径插上就可以了，这一步是很重要的，千万小小心。
3，支架和镜头安装好以后然后把显示器固定好，固定好以后，再把一些链接线连上这样就可以了。
酶标仪是干什么用的？123
2021-08-10
显微镜日常维护和注意事项
1．所有镜头表面必须保持清洁，落在镜头表面的灰尘，可用吹风球吹去，也可用软毛刷轻轻的掸去掉。
2．当镜头表面沾有油污或指纹时，可用脱脂棉蘸少许3:7无水乙醇和乙醚的混合液轻轻擦试。
3．不能用有机溶液清擦其它部件表面，特别是塑料零件，可用软布蘸少量中性洗涤剂清擦。
4．在任何情况下操作人员不能用棉团、干布块或干镜头纸擦试镜头表面，否则会刮伤镜头表面，严重损坏镜头，也不要用水擦试镜头，这样会在镜头表面残留一些水迹，因而可能滋生霉菌，严重损坏显微镜。
5．仪器工作的间歇期间，为了防止灰尘进入镜筒或透镜表面，可将目镜留在镜筒上，或盖上防尘塞，并用防尘罩将仪器罩住。
6．仪器使用完毕，必须用防尘罩盖上，并入置在干燥的工作橱内，在其附近不得存入有挥发性的化学药品，以防仪器锈蚀。
7．显微镜移动时应轻拿轻放，避免碰撞。
1．所有镜头表面必须保持清洁，落在镜头表面的灰尘，可用吹风球吹去，也可用软毛刷轻轻的掸去掉。
2．当镜头表面沾有油污或指纹时，可用脱脂棉蘸少许3:7无水乙醇和乙醚的混合液轻轻擦试。
3．不能用有机溶液清擦其它部件表面，特别是塑料零件，可用软布蘸少量中性洗涤剂清擦。
4．在任何情况下操作人员不能用棉团、干布块或干镜头纸擦试镜头表面，否则会刮伤镜头表面，严重损坏镜头，也不要用水擦试镜头，这样会在镜头表面残留一些水迹，因而可能滋生霉菌，严重损坏显微镜。
5．仪器工作的间歇期间，为了防止灰尘进入镜筒或透镜表面，可将目镜留在镜筒上，或盖上防尘塞，并用防尘罩将仪器罩住。
6．仪器使用完毕，必须用防尘罩盖上，并入置在干燥的工作橱内，在其附近不得存入有挥发性的化学药品，以防仪器锈蚀。
7．显微镜移动时应轻拿轻放，避免碰撞。
头戴式显微镜可以用来练习血管吻合吗_问答详情_显微镜_影像显示_...123
hzj9303142017-06-07
请问各位战友头戴式显微镜(700多块钱，2.5倍)可以用来联系血管吻合吗
光学显微镜的调试123
黛雏2021-08-01
为了使显微镜的视野能受到均匀而又充分的照明，在显微镜初次安装和调试时，就必须把照明光路系统调整好，这是正确使用显微镜，并获得正确、可*结果的重要手段和最基本的要求。此外，正确掌握照明光路系统的调整，是使用显微镜过程中更换光源灯泡后所必经的步骤，也是在日常使用过程中不时地检验显微镜性能的必要手段。显微镜照明光路系统的调整主要有以下4项内容：
1．照明光源灯室在显微外的初步调整
① 首先将灯室的外壳打开，压弹簧夹子将卤素灯泡装入插座中，安装时避免手指直接接触灯泡（可用柔软的布或纸隔住），以免灯泡上留有指纹等脏物，影响灯泡的使用寿命。
②把灯室摆在桌面上，接通电源后，用专用的螺丝刀调节灯的调焦旋钮孔（标有“←→”），使灯丝投影在1-2m外的墙上，将灯丝成像调至清晰；然后调节灯的高低位置调节丝孔（标有“──”），使灯丝位置高低适当；再调节灯的左右位置调节螺丝孔（标有“──”），使灯丝左右位置合适。
2．光源发光体（灯丝）在显微镜内位置的检验和校正 目的是为了把发光体的像端端正正地调入物镜的视域范围内，从光源的角度去确保显微镜的视域受到充分而均匀的照明，这是调整库勒照明系统的前提条件。需要的基本工具：对中望远镜购置显微镜时已配备。
① 拔掉灯库内的毛玻璃套筒，把灯室装回显微镜上
②选用10×物镜，开亮光源程序找样品并调焦清晰，再换用40×物镜把样品调焦清晰（40×物镜可以看清灯丝的全貌）；
③把聚光镜的孔径光阑和视场光阑均开到最大；
④拔掉其中一个目镜，换上对中望远镜，抓住白色部分，另一手伸缩黑色接目镜，就可在视野中看到灯丝像；
⑤如灯丝位置不合适，调“──”孔，把灯丝像沿水平方向调好，调“──”孔，把丝像沿垂直方向调好，直至将灯丝像调至刚好充满物镜孔径的光圆像；
⑥调整完毕后，将毛玻璃套筒插回原位，拔掉对中望远镜，换回目镜作下一步调整。以上所述照明光源灯室在显微镜外的调整和光源发光体在显微镜内位置的校验，只需在显微镜初次安装调试及更换灯泡时进行，平时使用显微镜时不能随意乱调乱动。万一调乱时，可按上述步骤调回原状。
3．库勒照明（Kohler）系统的正确调整 显微镜的正确调试，主要工作之一是照明光路系统的调整，而其中的关键是库勒照明系统的调整。对于每一位使用显微镜的人员，特别是作显微照像的人员来说，应该对库勒照明系统的原理及其调整步骤有一定的了解和掌握，才能充分发挥显微镜应有的功能，拍出来的照片才能在效果上比较一致而又完善。库勒照明系统的原理简单来说就是：光源发光体上任意一点发出的光，可以照明显微镜的视域范围，而光源发光体上每一点所发出的光汇集起来，在显微镜的视域中就实现了非常充分而又均匀的照明。调整库勒照明系统的目的，是为了使所观察的视域能获得均匀而又充分的照明，防止杂散光对照像系统造成影响或干扰，以免照像时在底片形成灰雾。高调整库勒照明系统的必要部件：视场光阑、可进行合轴调整的聚光镜系统。
① 选用10×物镜和10×目镜
② 把聚光镜前端透镜摆进光路中，孔径光阑调至适中的位置上（不大不小），再把聚光镜升到最顶的位置上，聚光镜转盘调至明视野“J”位置
③ 把视场光阑调至最小（0.1）
④ 载物台上放上已封片的生物样品，开亮光源，调焦清晰
⑤ 视域中会出现一个局部照明的区域或亮斑，这是视场光阑的模糊像，在其中可以清晰地看到样品的细节；在它之外是较暗的视域，不一定能把样品的细节看得清楚
⑥把聚光镜微微地向下调，使视野中的亮斑逐渐收小，慢慢变成一个清晰的多边形象，这便是视场光阑的清晰像；
⑦一般情况下，多边形象并不在视域中央，需要调整聚光镜的一对调中螺丝，把视场光阑多边形的像调至中央位置；
⑧逐渐开大视场光阑，使多边形象成为视域的内接多边形，进一步核对调中的状况，如对中不够理想，继续微微调对中螺丝；
⑨将视场光阑稍为再微微开大一些，使它的多边形象恰好消失在视域的边缘上，至此，库勒照明系统调整完毕。库勒照明系统调整好以后，整个视域照明均匀，拍摄的显微照片明亮清晰，反差正常。在日后使用过程中应特别注意： a. 视场光阑不可任意开大，但可随物镜倍数的增大而将视场光阑收小，随物镜倍数的减小而开大； b. 聚光镜的高低位置不准乱调，否则会破坏已调整好的库勒照明系统； c. 使用10×以下物镜时要将聚光镜前端透镜摆出光路外，使用10×或10×以上物镜时要将前端透镜摆入光路中； d. 关于物镜倍数与视场光阑大小配合问题，在实际使用过程中，作为一般观察不一定要收小或开大视场光阑，但作显微照相时，为了避免杂散光线对照相系统的干扰，以便能拍摄到较完善的照片，则应在使用每一个倍数的物镜时，把视场光阑调节到正好消失于所观察的视域边上，这是比较繁复的工作，但又非做不可。较为简便的方法是把与各个倍数物镜相对应的视场光阑事先调整好，并作好记号，以后使用时根据记号直接调至相应的位置。
4．孔径光阑的正确使用 由于聚光镜的孔径光阑可以影响显微镜的分辨率，使用时应掌握正确的使用方法。过去由于对孔径光阑的认识不足，往往把它当作是调节视野亮度的工具。虽然调节孔径光阑在一定程度上可以改变视野的亮度，但会直接影响成像的反差、对比度及分辨率，在使用过程中应尽可能避免。为了发挥聚光镜孔径光阑的作用，以便在观察时，尤其在作显微照相时获得最佳分辨率，在每换用一个倍数的物镜时，在样品调焦清晰后，需要调节孔径光阑，使它的大小正好等于所用物镜数值孔径（物镜孔径像）的2/3 。调整方法是用对中望远镜对焦于视野中黑色相差环上，调节孔径光阑，可以看到一个多边形的孔径光阑像，然后调到等于物镜孔径像的2/3，即介于黑色相差环外与圆形视域内之间。为方便起见，可把与各倍数物镜相对应的孔径光阑预先调整好，并作好标记，以免每次使用都要重新调整。 显微镜成像光路系统的调整，是根据不同显微镜检术的需要而进行的。所谓显微镜检术（microscopy），概括而言就是以显微镜观察样品时所使用的照明方法，以及如何使样品所成的像能获得更良好反差的技术与方法。以下简述显微镜检术中已成熟的几种方法及对应的显微镜成像光路系统的调整方法。
1．透射光明视野：
这是自显微镜发明以来最传统、最普遍的应用方法。基本部件： a. 物镜：任何物镜都可作明视野观察； b. 聚光镜：各种聚光镜均可，最好配有孔径光阑。调整方法：在上述显微镜的库勒照明系统调整好后，即可应用明视野法。适用范围：所有已染色的组织切片、血液涂片等。注意事项： a. 使用明视野方法观察时，一定要将库勒照明系统调整好； b. 视场光阑不可任意开大，使用10×、10×以下和10×以上物镜时，要将聚光镜前端透镜分别摆事实出和摆进光路中； c. 不可用聚光镜的孔径光阑来调节视野的亮度，更不要乱调聚光镜的高低位置，否则，会降低显微镜的分辨率和破坏已调整好的库勒照明系统； d. 作显微照相时，每换用一个倍数的物镜，就要调节聚光镜的孔径光阑，使它的大小正好等于所用物镜数值孔径的2/3 。
2．透射光相差法：
这是现代显微镜检术中的一种反差增强法。基本部件：相差物镜、明视野与相差兼用的多用途聚光镜、对中望远镜、绿色滤光片。
调整方法：
a. 在库勒照明系统调整好的基础上，用明视野方法把样品调焦清晰
b. 把聚光镜转到Ph1对准转盘刻度线位置，选用10×相差物镜，换上待观察的透明样品
c. 拔掉其中一个目镜，换上对中望远镜，并调焦于视野中的两个相差环上（物镜的黑色相差环和聚光镜的透光相差环）
d. 视野中的两个相差环不一定重合，调节聚光镜上的两个调节装置（调整相差环左右位置的调节杆和调整前后位置的摩擦式转钮），使透光环作前后左右移动而与黑环重合
e. 调整好后，换回观察用目镜，将绿色滤光片按入光路中，即可观察到样品的相差像
f. 有20×和40×物镜观察时，聚光镜应设在Ph2位置上，用100物镜时，聚光镜应设在Ph3位置上。
适用范围：适用于观察透明、未染色或不能染色的样品，如各种细胞、活组织、未染色或不染色的组织切片、水生生物等。
3．微分干涉相衬法：
为了克服相差法观察时样品细节像周围伴随有光晕，会掩没掉本来应该看见的细节，以及样品或组织切片厚度要求相当薄，原则上下能厚于10?m等局限性，利用双光束干涉的原理设计子微分干涉相衬法。
调整方法：
a. 必须在库勒明系统已调好的基础上才能调好DIC方法
b. 先用10×物镜，以明视野先确定好能把样品看清晰的物镜调焦位置
c. 把起偏器（polarizer）摆入照明光路中，注意其取向应为东—西方向
d. 把聚光镜转盘转到与10×物镜对应使用的位置上，即DIC 0.3—0.4
e. 在物镜后方或物镜转换器上插入10×物镜使用的DIC插片（DIC slider）
f. 把检偏器（analyser）插入成像光路中，注意其取向应为南—北方
g. 换上待观察的透明样品，开亮光源把样品调焦清晰
h. 调节DIC插片，使微分干涉相衬的像达到最佳效果，也就是浮雕效果最为明显
i. 同时可调节聚光镜的孔径光阑，使反差的效果也达到最佳
j. 然后再细微调样品的细节，可见样品中不同层面上的结构
k. 如果把补色器（first order red retardation plate）插入，并同时调节DIC插片，可在视野中看到不断变化的绚丽色彩，红、橙、黄、绿、蓝、紫、粉红、粉紫及金黄色都具有。适用范围：透明或不能染色的组织切片，厚度可达100?m左右，培养中的活组织和活细胞、小生生物等。
4．落射光激发的荧光法（incident-loght fluorescence Epi-FL）：
简称为落射荧光法，是近代显微镜检术中新发展出来的一种强有力的反差增强法。它将激发荧光用的光源改在物镜的上方，光由物镜上方经反光镜射入物镜去激发样品，从样品上被激发的荧光经物镜成像并穿透反光镜而由目镜观察。该方法较简便，效率高，50W的光源强度比透射荧光法的250W还强。荧光方法是利用波长较短的紫外光、紫光、蓝紫光、蓝光及绿光等去激发样品，只要样品中含有可产生荧光的成分，它便吸收短波的激发光而释放出波长较长的荧光。不同物质只能吸改特定波长的激发光，而释放的荧光也会有特定的波长，因而用作特异性的鉴定十分有效，如某些致病的细菌和螺旋体，受紫外光激发后能发出它们特有的荧光，很容易作出鉴定，这种利用物质吸收激发光后放出特有荧光的方法称为自发荧光法。某些物质自身不会吸收激发光，或吸收后不能释放荧光，但可以吸收或吸附特定的荧光色素或染料，而这些特定的荧光色素或染料也只能吸收特定的激发光，再释放出特定的荧光，从而间接地鉴别出某种物质，这称为间接荧光法。上述荧光方法广泛应用于医学、生物学及工业的特异性研究和鉴别上。调整方法：荧光显微镜或附有荧光部件的显微镜，调整的方法大致相同。
① 汞灯的安装：
a. 打开包装，取出汞灯将其小心安装在上电极散热帽上，安装时注意手指不能直接接触灯管和散热帽的正面，汞灯的封气口要对向散热帽的左侧或右侧
b. 把汞灯的上电极引张安装并固定在散热帽底面的小孔上，再把汞灯的下电极及上电极引线另一端，分别安装在灯座上各自的插孔中并固定
c. 锁紧散热片上的螺丝后，把汞灯连同灯座及散热帽小心装入灯室中，锁紧相应的螺丝，再把灯座上的连线和插座插到汞灯电源后部专用的插座上。
d. 详细的安装方法请参照有关说明书。
② 汞灯灯室在显微镜外的初步调整：
a. 接通汞灯电源，让汞灯预热10-15min
b. 把汞灯灯室摆放在桌面上，让汞弧投影到2-3m外的墙上，划一条与灯室窗口中心线对地高度一样的水平线作为参考线
c. 转动灯室调焦旋钮，使汞弧的像清晰地投影于墙上
d. 分别调节灯室外壳上的5个调节螺丝孔，把汞弧的像其反射像调成并排且尽量*近，但不要重叠在一起。
③汞灯汞弧在显微镜内位置的检验：
a. 将汞灯照明光路系统中的视场光阑开到最大
b. 把荧光滤光片组推到蓝光激发的位置上，以避免汞灯中的蓝光太刺眼
c. 把观察的样品或一块载玻片放在物台上，盖上一张比盖玻片稍大且洁白的薄纸
d. 取下一个物镜，使激发的蓝光经物镜转换器的空档照在白纸上，白纸上会有一蓝色的圆形照明区域，汞弧的像及其反射像都应该出现在这区域的中央部位，否则，可调节灯室调焦旋钮至最清晰，然后分别调节灯室外壳上的5个调节螺丝孔，直至汞弧的像及其反射像并排在照明区域的中央位置。
e. 调好之后，把物镜装回去，通过目镜可见白纸被蓝光激发后发射出的黄绿色荧光
f. 仔细调焦，可看清白纸的纤维；取去白纸，样品上的荧光细节隐约可见而很容易调焦清晰。
④汞灯使用注意事项 通常使用的为50W超高气压汞灯，灯管内通有一对钨电极和液态汞（室温下附在管壁上），未点燃时，管内气压很低，在灯管的两电极间施加电压角发点燃后，汞气化为汞蒸气形成汞弧而产生强光，温度升高，管内气压迅速升到10个大气压。由于是高气压的气体放电，必须了解其特性才能安全地使用汞灯。
a. 汞灯接通电源后需要10-15min预热时间，汞才能充分汽化并形成汞弧，产生高亮度而稳定的激发光。因此，观察前要提早通电
b. 汞灯在使用过程中，不要随意开关汞灯的电源
c. 关掉汞灯电源后，必须等待15-20min，待汞灯自燃冷却后才可再次接通电源，违反这一操作规定时，将会造成严重后果！由于汞灯内的汞蒸气未完全液化，汞蒸气内阻很小，一旦通电在两电极间施加电压，汞灯内形成强大的电流，轻则烧断保险丝或烧毁汞灯电源中的扼流圈，重则汞灯爆炸，汞蒸气弥漫整个实验室，造成工作人员中毒，不仅损失了汞灯，还会炸毁灯室内的集光-聚光部件。
d. 汞灯的使用寿命一般只有300h，使用得当可达600h，使用寿命与开关的次数成反比，应集中一批样吕作2-3h的观察。汞灯价格及昂贵，应珍惜使用。
e. 汞灯寿命终结的标志是点燃困难，灯管发黑。
5．暗视野法（dark field）：
许多透明或半透明的样品，如细菌、微生物、细胞内的精细结构及结晶体的内含物等，在明视野显微镜中不容易看清楚，如果采用暗视野法就可以大大提高样品的可视度。以暗视野法所看到的是衬托在黑暗视野背景中发亮的样品轮廓及其细节。普遍光学显微镜的最高分辨率为0.2μm，而暗视野显微镜虽然对样品的细节构造分辨不清楚，但却可看到0.004μm以上微细颗粒的存在，即可以看到亚显微结构，特别适合用来观察微细的颗粒与细菌等。调整方法：暗视野法的主要必需部件是暗视野聚光镜。使用时须先用明视野聚光镜把库勒照明系统调整好。换上暗视野聚光镜时，要把载玻片（样品）移开，将浸没油滴在聚光镜顶部，再把样品载玻片搁在物台上，浸没油便充填在两者之间，这种聚光镜须与装有可变光阑的100×油镜配用。另一种中倍率干式暗视野聚光镜可与中倍率的物镜配用，这种聚光镜具有中央光挡，照明光只能透过光档与聚光镜边缘之间的透光环才能进入聚光镜内。对于配备齐全的相差显微镜，与编号为Ph3物镜配用的相差聚光镜相差环，可以和10×及10×以下的相差物镜配用而形成低倍率的暗视野效果。向左转|向右转
1．照明光源灯室在显微外的初步调整
① 首先将灯室的外壳打开，压弹簧夹子将卤素灯泡装入插座中，安装时避免手指直接接触灯泡（可用柔软的布或纸隔住），以免灯泡上留有指纹等脏物，影响灯泡的使用寿命。
②把灯室摆在桌面上，接通电源后，用专用的螺丝刀调节灯的调焦旋钮孔（标有“←→”），使灯丝投影在1-2m外的墙上，将灯丝成像调至清晰；然后调节灯的高低位置调节丝孔（标有“──”），使灯丝位置高低适当；再调节灯的左右位置调节螺丝孔（标有“──”），使灯丝左右位置合适。
2．光源发光体（灯丝）在显微镜内位置的检验和校正 目的是为了把发光体的像端端正正地调入物镜的视域范围内，从光源的角度去确保显微镜的视域受到充分而均匀的照明，这是调整库勒照明系统的前提条件。需要的基本工具：对中望远镜购置显微镜时已配备。
① 拔掉灯库内的毛玻璃套筒，把灯室装回显微镜上
②选用10×物镜，开亮光源程序找样品并调焦清晰，再换用40×物镜把样品调焦清晰（40×物镜可以看清灯丝的全貌）；
③把聚光镜的孔径光阑和视场光阑均开到最大；
④拔掉其中一个目镜，换上对中望远镜，抓住白色部分，另一手伸缩黑色接目镜，就可在视野中看到灯丝像；
⑤如灯丝位置不合适，调“──”孔，把灯丝像沿水平方向调好，调“──”孔，把丝像沿垂直方向调好，直至将灯丝像调至刚好充满物镜孔径的光圆像；
⑥调整完毕后，将毛玻璃套筒插回原位，拔掉对中望远镜，换回目镜作下一步调整。以上所述照明光源灯室在显微镜外的调整和光源发光体在显微镜内位置的校验，只需在显微镜初次安装调试及更换灯泡时进行，平时使用显微镜时不能随意乱调乱动。万一调乱时，可按上述步骤调回原状。
3．库勒照明（Kohler）系统的正确调整 显微镜的正确调试，主要工作之一是照明光路系统的调整，而其中的关键是库勒照明系统的调整。对于每一位使用显微镜的人员，特别是作显微照像的人员来说，应该对库勒照明系统的原理及其调整步骤有一定的了解和掌握，才能充分发挥显微镜应有的功能，拍出来的照片才能在效果上比较一致而又完善。库勒照明系统的原理简单来说就是：光源发光体上任意一点发出的光，可以照明显微镜的视域范围，而光源发光体上每一点所发出的光汇集起来，在显微镜的视域中就实现了非常充分而又均匀的照明。调整库勒照明系统的目的，是为了使所观察的视域能获得均匀而又充分的照明，防止杂散光对照像系统造成影响或干扰，以免照像时在底片形成灰雾。高调整库勒照明系统的必要部件：视场光阑、可进行合轴调整的聚光镜系统。
① 选用10×物镜和10×目镜
② 把聚光镜前端透镜摆进光路中，孔径光阑调至适中的位置上（不大不小），再把聚光镜升到最顶的位置上，聚光镜转盘调至明视野“J”位置
③ 把视场光阑调至最小（0.1）
④ 载物台上放上已封片的生物样品，开亮光源，调焦清晰
⑤ 视域中会出现一个局部照明的区域或亮斑，这是视场光阑的模糊像，在其中可以清晰地看到样品的细节；在它之外是较暗的视域，不一定能把样品的细节看得清楚
⑥把聚光镜微微地向下调，使视野中的亮斑逐渐收小，慢慢变成一个清晰的多边形象，这便是视场光阑的清晰像；
⑦一般情况下，多边形象并不在视域中央，需要调整聚光镜的一对调中螺丝，把视场光阑多边形的像调至中央位置；
⑧逐渐开大视场光阑，使多边形象成为视域的内接多边形，进一步核对调中的状况，如对中不够理想，继续微微调对中螺丝；
⑨将视场光阑稍为再微微开大一些，使它的多边形象恰好消失在视域的边缘上，至此，库勒照明系统调整完毕。库勒照明系统调整好以后，整个视域照明均匀，拍摄的显微照片明亮清晰，反差正常。在日后使用过程中应特别注意： a. 视场光阑不可任意开大，但可随物镜倍数的增大而将视场光阑收小，随物镜倍数的减小而开大； b. 聚光镜的高低位置不准乱调，否则会破坏已调整好的库勒照明系统； c. 使用10×以下物镜时要将聚光镜前端透镜摆出光路外，使用10×或10×以上物镜时要将前端透镜摆入光路中； d. 关于物镜倍数与视场光阑大小配合问题，在实际使用过程中，作为一般观察不一定要收小或开大视场光阑，但作显微照相时，为了避免杂散光线对照相系统的干扰，以便能拍摄到较完善的照片，则应在使用每一个倍数的物镜时，把视场光阑调节到正好消失于所观察的视域边上，这是比较繁复的工作，但又非做不可。较为简便的方法是把与各个倍数物镜相对应的视场光阑事先调整好，并作好记号，以后使用时根据记号直接调至相应的位置。
4．孔径光阑的正确使用 由于聚光镜的孔径光阑可以影响显微镜的分辨率，使用时应掌握正确的使用方法。过去由于对孔径光阑的认识不足，往往把它当作是调节视野亮度的工具。虽然调节孔径光阑在一定程度上可以改变视野的亮度，但会直接影响成像的反差、对比度及分辨率，在使用过程中应尽可能避免。为了发挥聚光镜孔径光阑的作用，以便在观察时，尤其在作显微照相时获得最佳分辨率，在每换用一个倍数的物镜时，在样品调焦清晰后，需要调节孔径光阑，使它的大小正好等于所用物镜数值孔径（物镜孔径像）的2/3 。调整方法是用对中望远镜对焦于视野中黑色相差环上，调节孔径光阑，可以看到一个多边形的孔径光阑像，然后调到等于物镜孔径像的2/3，即介于黑色相差环外与圆形视域内之间。为方便起见，可把与各倍数物镜相对应的孔径光阑预先调整好，并作好标记，以免每次使用都要重新调整。 显微镜成像光路系统的调整，是根据不同显微镜检术的需要而进行的。所谓显微镜检术（microscopy），概括而言就是以显微镜观察样品时所使用的照明方法，以及如何使样品所成的像能获得更良好反差的技术与方法。以下简述显微镜检术中已成熟的几种方法及对应的显微镜成像光路系统的调整方法。
1．透射光明视野：
这是自显微镜发明以来最传统、最普遍的应用方法。基本部件： a. 物镜：任何物镜都可作明视野观察； b. 聚光镜：各种聚光镜均可，最好配有孔径光阑。调整方法：在上述显微镜的库勒照明系统调整好后，即可应用明视野法。适用范围：所有已染色的组织切片、血液涂片等。注意事项： a. 使用明视野方法观察时，一定要将库勒照明系统调整好； b. 视场光阑不可任意开大，使用10×、10×以下和10×以上物镜时，要将聚光镜前端透镜分别摆事实出和摆进光路中； c. 不可用聚光镜的孔径光阑来调节视野的亮度，更不要乱调聚光镜的高低位置，否则，会降低显微镜的分辨率和破坏已调整好的库勒照明系统； d. 作显微照相时，每换用一个倍数的物镜，就要调节聚光镜的孔径光阑，使它的大小正好等于所用物镜数值孔径的2/3 。
2．透射光相差法：
这是现代显微镜检术中的一种反差增强法。基本部件：相差物镜、明视野与相差兼用的多用途聚光镜、对中望远镜、绿色滤光片。
调整方法：
a. 在库勒照明系统调整好的基础上，用明视野方法把样品调焦清晰
b. 把聚光镜转到Ph1对准转盘刻度线位置，选用10×相差物镜，换上待观察的透明样品
c. 拔掉其中一个目镜，换上对中望远镜，并调焦于视野中的两个相差环上（物镜的黑色相差环和聚光镜的透光相差环）
d. 视野中的两个相差环不一定重合，调节聚光镜上的两个调节装置（调整相差环左右位置的调节杆和调整前后位置的摩擦式转钮），使透光环作前后左右移动而与黑环重合
e. 调整好后，换回观察用目镜，将绿色滤光片按入光路中，即可观察到样品的相差像
f. 有20×和40×物镜观察时，聚光镜应设在Ph2位置上，用100物镜时，聚光镜应设在Ph3位置上。
适用范围：适用于观察透明、未染色或不能染色的样品，如各种细胞、活组织、未染色或不染色的组织切片、水生生物等。
3．微分干涉相衬法：
为了克服相差法观察时样品细节像周围伴随有光晕，会掩没掉本来应该看见的细节，以及样品或组织切片厚度要求相当薄，原则上下能厚于10?m等局限性，利用双光束干涉的原理设计子微分干涉相衬法。
调整方法：
a. 必须在库勒明系统已调好的基础上才能调好DIC方法
b. 先用10×物镜，以明视野先确定好能把样品看清晰的物镜调焦位置
c. 把起偏器（polarizer）摆入照明光路中，注意其取向应为东—西方向
d. 把聚光镜转盘转到与10×物镜对应使用的位置上，即DIC 0.3—0.4
e. 在物镜后方或物镜转换器上插入10×物镜使用的DIC插片（DIC slider）
f. 把检偏器（analyser）插入成像光路中，注意其取向应为南—北方
g. 换上待观察的透明样品，开亮光源把样品调焦清晰
h. 调节DIC插片，使微分干涉相衬的像达到最佳效果，也就是浮雕效果最为明显
i. 同时可调节聚光镜的孔径光阑，使反差的效果也达到最佳
j. 然后再细微调样品的细节，可见样品中不同层面上的结构
k. 如果把补色器（first order red retardation plate）插入，并同时调节DIC插片，可在视野中看到不断变化的绚丽色彩，红、橙、黄、绿、蓝、紫、粉红、粉紫及金黄色都具有。适用范围：透明或不能染色的组织切片，厚度可达100?m左右，培养中的活组织和活细胞、小生生物等。
4．落射光激发的荧光法（incident-loght fluorescence Epi-FL）：
简称为落射荧光法，是近代显微镜检术中新发展出来的一种强有力的反差增强法。它将激发荧光用的光源改在物镜的上方，光由物镜上方经反光镜射入物镜去激发样品，从样品上被激发的荧光经物镜成像并穿透反光镜而由目镜观察。该方法较简便，效率高，50W的光源强度比透射荧光法的250W还强。荧光方法是利用波长较短的紫外光、紫光、蓝紫光、蓝光及绿光等去激发样品，只要样品中含有可产生荧光的成分，它便吸收短波的激发光而释放出波长较长的荧光。不同物质只能吸改特定波长的激发光，而释放的荧光也会有特定的波长，因而用作特异性的鉴定十分有效，如某些致病的细菌和螺旋体，受紫外光激发后能发出它们特有的荧光，很容易作出鉴定，这种利用物质吸收激发光后放出特有荧光的方法称为自发荧光法。某些物质自身不会吸收激发光，或吸收后不能释放荧光，但可以吸收或吸附特定的荧光色素或染料，而这些特定的荧光色素或染料也只能吸收特定的激发光，再释放出特定的荧光，从而间接地鉴别出某种物质，这称为间接荧光法。上述荧光方法广泛应用于医学、生物学及工业的特异性研究和鉴别上。调整方法：荧光显微镜或附有荧光部件的显微镜，调整的方法大致相同。
① 汞灯的安装：
a. 打开包装，取出汞灯将其小心安装在上电极散热帽上，安装时注意手指不能直接接触灯管和散热帽的正面，汞灯的封气口要对向散热帽的左侧或右侧
b. 把汞灯的上电极引张安装并固定在散热帽底面的小孔上，再把汞灯的下电极及上电极引线另一端，分别安装在灯座上各自的插孔中并固定
c. 锁紧散热片上的螺丝后，把汞灯连同灯座及散热帽小心装入灯室中，锁紧相应的螺丝，再把灯座上的连线和插座插到汞灯电源后部专用的插座上。
d. 详细的安装方法请参照有关说明书。
② 汞灯灯室在显微镜外的初步调整：
a. 接通汞灯电源，让汞灯预热10-15min
b. 把汞灯灯室摆放在桌面上，让汞弧投影到2-3m外的墙上，划一条与灯室窗口中心线对地高度一样的水平线作为参考线
c. 转动灯室调焦旋钮，使汞弧的像清晰地投影于墙上
d. 分别调节灯室外壳上的5个调节螺丝孔，把汞弧的像其反射像调成并排且尽量*近，但不要重叠在一起。
③汞灯汞弧在显微镜内位置的检验：
a. 将汞灯照明光路系统中的视场光阑开到最大
b. 把荧光滤光片组推到蓝光激发的位置上，以避免汞灯中的蓝光太刺眼
c. 把观察的样品或一块载玻片放在物台上，盖上一张比盖玻片稍大且洁白的薄纸
d. 取下一个物镜，使激发的蓝光经物镜转换器的空档照在白纸上，白纸上会有一蓝色的圆形照明区域，汞弧的像及其反射像都应该出现在这区域的中央部位，否则，可调节灯室调焦旋钮至最清晰，然后分别调节灯室外壳上的5个调节螺丝孔，直至汞弧的像及其反射像并排在照明区域的中央位置。
e. 调好之后，把物镜装回去，通过目镜可见白纸被蓝光激发后发射出的黄绿色荧光
f. 仔细调焦，可看清白纸的纤维；取去白纸，样品上的荧光细节隐约可见而很容易调焦清晰。
④汞灯使用注意事项 通常使用的为50W超高气压汞灯，灯管内通有一对钨电极和液态汞（室温下附在管壁上），未点燃时，管内气压很低，在灯管的两电极间施加电压角发点燃后，汞气化为汞蒸气形成汞弧而产生强光，温度升高，管内气压迅速升到10个大气压。由于是高气压的气体放电，必须了解其特性才能安全地使用汞灯。
a. 汞灯接通电源后需要10-15min预热时间，汞才能充分汽化并形成汞弧，产生高亮度而稳定的激发光。因此，观察前要提早通电
b. 汞灯在使用过程中，不要随意开关汞灯的电源
c. 关掉汞灯电源后，必须等待15-20min，待汞灯自燃冷却后才可再次接通电源，违反这一操作规定时，将会造成严重后果！由于汞灯内的汞蒸气未完全液化，汞蒸气内阻很小，一旦通电在两电极间施加电压，汞灯内形成强大的电流，轻则烧断保险丝或烧毁汞灯电源中的扼流圈，重则汞灯爆炸，汞蒸气弥漫整个实验室，造成工作人员中毒，不仅损失了汞灯，还会炸毁灯室内的集光-聚光部件。
d. 汞灯的使用寿命一般只有300h，使用得当可达600h，使用寿命与开关的次数成反比，应集中一批样吕作2-3h的观察。汞灯价格及昂贵，应珍惜使用。
e. 汞灯寿命终结的标志是点燃困难，灯管发黑。
5．暗视野法（dark field）：
许多透明或半透明的样品，如细菌、微生物、细胞内的精细结构及结晶体的内含物等，在明视野显微镜中不容易看清楚，如果采用暗视野法就可以大大提高样品的可视度。以暗视野法所看到的是衬托在黑暗视野背景中发亮的样品轮廓及其细节。普遍光学显微镜的最高分辨率为0.2μm，而暗视野显微镜虽然对样品的细节构造分辨不清楚，但却可看到0.004μm以上微细颗粒的存在，即可以看到亚显微结构，特别适合用来观察微细的颗粒与细菌等。调整方法：暗视野法的主要必需部件是暗视野聚光镜。使用时须先用明视野聚光镜把库勒照明系统调整好。换上暗视野聚光镜时，要把载玻片（样品）移开，将浸没油滴在聚光镜顶部，再把样品载玻片搁在物台上，浸没油便充填在两者之间，这种聚光镜须与装有可变光阑的100×油镜配用。另一种中倍率干式暗视野聚光镜可与中倍率的物镜配用，这种聚光镜具有中央光挡，照明光只能透过光档与聚光镜边缘之间的透光环才能进入聚光镜内。对于配备齐全的相差显微镜，与编号为Ph3物镜配用的相差聚光镜相差环，可以和10×及10×以下的相差物镜配用而形成低倍率的暗视野效果。向左转|向右转
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