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电泳分离的蛋白质肽谱和序列分析实验一方案3 蛋白质还原和S羧甲基化:微量方法
来自 : 蚂蚁淘
实验材料
试剂、试剂盒
仪器、耗材
实验步骤

一、样品还原

1.利用冷冻干燥离心机蒸发纯化的蛋白质样品溶液(含0.01%~0.02%Tween-20),直到少于10ul。

2.加入150ul储存液到含有近乎干燥的蛋白质样品的离心管中,轻轻弹击或振荡离心管,使样品彻底混匀,然后略微离心样品。

3.加人16ul还原缓冲液,使DTT的终浓度为15mmol/L。

4.样品在40°C孵育4.5~5h。

二、样品烷基化

5.还原过的蛋白质样品溶液置于室温。

6.加入20ul0.5mol/L碘乙酸,至碘乙酸的终浓度为0.05mol/L。

7.25°C避光反应30min。

三、S-羧甲基化蛋白质的回收(脱盐和浓缩)

8.将2%~3%(约300ng蛋白质)的总混合物上样到反相微孔层析柱中(50mmX1mm内径HPLC系统)。

在加人大量的蛋白质至RP-HPLC之前,用2%~3%的总样品(约300ng)做预实验,以确定样品能够从反相柱上回收。这个脱盐的预实验极为重要,因为一些蛋白质在S-羧甲基化后会有不同的层析结果(比如,它们比天然的蛋白质更加疏水)。如果S-羧甲基化蛋白的疏水性比天然蛋白质的疏水性高得多,用TFA/乙腈溶剂系统就很难从反相柱上回收蛋白质。这时可试用正丙醇代替乙腈,如果仍不行,试着用微尺寸排阻层析或快速微型脱盐系统对S-羧甲基化蛋白进行脱盐。

9.一旦确定S-竣甲基化蛋白质能够从反相柱上回收,即可加人剩余的蛋白质样品。

10.至于Tween-20调节含有S-竣甲基化蛋白的部分(一般在300~500ul0.1%TFA水溶液/乙腈中),至终浓度为0.2g/L。关于收集到的S-羧甲基化蛋白的酶解消化,见方案5。

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