请使用支持JavaScript的浏览器! 放线菌素D诱导HL60细胞凋亡的观察实验一凝胶电泳法_蚂蚁淘,【正品极速】生物医学科研用品轻松购|ebiomall -蚂蚁淘商城
当前位置: > 首页 > 技术文章 >
放线菌素D诱导HL60细胞凋亡的观察实验一凝胶电泳法
来自 : 蚂蚁淘
实验方法原理
放线菌素D(actinomycinD)是抗肿瘤类抗生素,其主要作用是通过与DNA结合,阻断依赖DNA的mRNA的合成,从而阻碍蛋白质合成,抑制瘤细胞分裂,引起细胞凋亡。细胞凋亡时,其核染色质的DNA出现缺口甚至断裂,致使染色质凝聚、边缘化甚至呈现DNA碎片。利用与DNA结合的荧光染料染色后,在荧光显微镜下即可观察到上述变化。Hoechst33258为与A-T结合的特异性DNA染料,对活细胞和固定细胞均能染色。
实验材料
试剂、试剂盒
仪器、耗材
实验步骤
一、细胞基因组DNA提取
 
1. 药物处理:取处于对数生长期的HL-60细胞(5×105个/ml)加入放线菌素D至终浓度5ug/ml,37℃孵育20小时。
 
2. 收集细胞:4℃,1500×g,离心5min,弃上清。
 
3. 清洗细胞:加入600ulPBS重悬细胞,1500×g,离心5min,弃上清。
 
4. 加入600ulNucleilysissolution,来回吸打数次。
 
5. 加入3ulRNAasesolution,颠倒离心管5次,混合样品。
 
6. 37℃,水浴30min,室温静置5min。
 
7. 加入200ulproteinprecipitationsolution,涡振20sec,置冰中5min。
 
8. 4℃,13000×g离心5min。小心吸上清于另一离心管中。
 
9. 向上清液中加入600ul异丙醇,颠倒混合。4℃,13000×g,离心5min。弃上清,收集沉淀DNA。
 
10. 加入600ul70%乙醇,颠倒数次,清洗DNA。4℃,13000×g,离心2min。小心弃上清,室温干燥沉淀10-15min。
 
11. 加入10ulDNArehydrationsolution,65℃,水浴30-60min,并定期轻柔振荡离心管使沉淀溶解。
 
12. 溶解液(即DNA提取样品)4℃保存备用。

二、琼脂糖凝胶电泳检测细胞凋亡
 
1. 灌制琼脂糖凝胶
 
(1)备好注胶槽,插上梳子。称1g琼脂糖,加100mlTAE,微波炉加热溶解。
 
(2)向胶槽中注入温热的1%琼脂糖胶,胶层厚度约3-5mm。
 
(3)室温静置30-45min,使琼脂糖胶完全凝结。小心拔出梳子,将凝胶放入电泳槽,使梳孔端靠近阴极(黑色)。
 
(4)向电泳槽中加入TAE,让液面刚好没过凝胶约1mm。

2. 加样,电泳
 
(1)在蜡膜上分别加3滴6×loadingbuffer,每滴2ul。
 
(2)从4℃冰箱中取出制备好的未经放线菌素D和经放线菌素D处理的DNA样品各10ul,加入到loadingbuffer中。在余下的一滴loading buffer中加5ulDNAmarker和5ul灭菌去离子水,反复吸打,充分混合。
 
(3)用加样器分别把上述样品缓慢加至琼脂糖凝胶的加样孔中。
 
(4)盖上电泳槽盖,接好电极插头,打开电源,电压调至100-110V,电泳45-60min。
 
(5)将电压调至零,关电源,拔出电极插头,打开电泳槽盖。
 
3. 染色观察
 
(1)取出凝胶,放入含有EB(0.5ug/ml)的溶液中,室温浸染20min。
 
(2)于暗室中,在紫外灯下进行观察。
 
(3)染色结果:经放线菌素D处理的细胞在琼脂糖凝胶电泳上呈现阶梯状DNA区带图谱(DNAladder),这是细胞凋亡的重要生化特征。而未经处理的细胞则没有DNA凋亡所特有的梯形条带。DNA断裂情况可与对照比较,断裂程度用DNAmarker所显条带度量。

三、凋亡细胞普通光镜下形态观察――Giemsa染色法
 
1. 收集凋亡细胞悬液于1.5ml离心管中,4℃,500rpm,离心5min。
 
2. 弃上清,将细胞重悬于PBS液中,制成细胞悬液。
 
3. 取100ml细胞悬液,涂于载玻片上,晾干。
 
4. 用甲醇固定1min,充分晾干。
 
5. 滴加Giemsa染液(工作液浓度),室温染色5min。
 
6. 用流水轻轻洗去染液,室温晾干。
 
7. 用二甲苯浸泡3min,去除杂质,待载片透明后,以树脂封片。
 
8. 普通纤维镜下观察。
 
9. 结果观察:Giemsa染色的标本,细胞核红紫色,细胞质蓝色,凋亡细胞的核染色质固缩边集,染色较深或核破裂;细胞膜皱褶、卷曲,或出泡芽生,形成凋亡小体。

四、凋亡细胞的荧光显微镜下形态观察
 
1. 培养细胞,诱导凋亡(在超净台进行)。
 
2. 收集细胞:1000g/min离心5min,其上清。
 
3. PBS(37℃)漂洗悬浮细胞。
 
4. 固定液(4℃)固定5min,500~1000g/min离心5min,弃上清。
 
5. 蒸馏水洗,500~1000g/min离心5min,弃上清。
 
6. 调整细胞数至0.5~0.2×106/ml。
 
7. 取100μl细胞悬液,加入1μlHoechst33258染液,染色10min。
 
8. 将10μl染色的悬浮细胞涂于载玻片,加盖玻片。
 
9. 放于荧光显微镜下观察。选用UV激发滤片和400-500nm阻断滤片。
 
10. 结果观察:细胞核呈蓝色。凋亡细胞的核染色质凝聚且边缘化,或玻
珠化,并可呈现DNA荧光碎片。
展开 
注意事项
1. 对大片段DNA不能振荡,应轻轻反复翻动离心管,以免机械剪切力损伤DNA链。
 
2. 收集沉淀DNA(特别是凋亡细胞的DNA)时需格外小心;
 
3. 样品加入样孔的位置应该合适;
 
4. 溴化乙锭为较强的致突变剂,应带乳胶手套操作;
 
5. 紫外光能损伤眼睛,不要直视光源;
 
6. 污染物须放入专用容器内,妥善处理。
 
7. Hoechst33258染液应4℃避光保存。
展开 
免责声明 本文仅代表作者个人观点,与本网无关。其创作性以及文中陈述文字和内容未经本站证实,对本文以及其中全部或者部分内容、文字的真实性、完整性、及时性本站不做任何保证或承诺,请读者仅作参考,并请自行核实相关内容。
版权声明 未经蚂蚁淘授权不得转载、摘编或利用其他方式使用上述作品。已经经本网授权使用作品的,应该授权范围内使用,并注明“来源:蚂蚁淘”。违反上述声明者,本网将追究其相关法律责任。
相关文章