（一）材料与试剂
2．
血清待检血清、标准结核阳性血清和结核阴性血清。
3．硝酸纤维膜孔径0.45µm。
4．氯化金（优质）
5．0.2Mol/LPB液
7．硝酸银显影液（现用现配）
明胶（20g/L）6.00ml
对苯二酚（57.90g/L）3.00ml
硝酸银（25g/L）0.20ml
pH3.5柠檬酸盐缓冲液1.00ml
对苯二酚和硝酸银溶液需避光保存，临用前将明胶加热溶解后，按上述比例依次混合。
pH3.5柠檬酸盐缓冲液的配制：
柠檬酸（C6H8O7·H2O）25.50g
柠檬酸三钠（C6H5Na3·2H2O）3.50g
去离子水加至100.00ml
溶解后即可使用。
8．定影液
硫代硫酸钠（Na2S2O3）20.0g
去离子水加至100.00ml
溶解即可。
（二）操作方法
1．胶体金的制备试验用水均要求三蒸馏水并过去离子柱，最终去离子水的电阻大于100万Ω。所有容器最终均用去离子水清洗。
（1）采用鞣酸—枸橼酸钠还原法制备
A液1％HAuCl42.00ml
去离子水158.00ml
B液1％枸橼酸钠8.00ml
0.1％Mol/LK2CO30.20ml
1％鞣酸0.20ml
去离子水31.60ml
将A液和B液分别于60℃水浴30min，并不时搅拌，迅速将B液加入至A液中，搅拌，颜色为深蓝色，继续加热至100℃，5min～10min，溶液颜色变为深红色，自然冷却后4℃保存。
（2）胶体金鉴定：外观呈深红色、晶莹透亮，迎着日光可见有光带。电镜观察胶体金粒子大小平均为10nm，颗粒大小一致，分布均匀。
2．胶体金与兔抗牛IgG用量比例的确定每ml胶体金所需的最低稳定蛋白量是30µg，根据试剂用量增加20％，所以每ml胶体金所需的最低稳定兔抗牛IgG量为36µg。
3．金标记兔抗牛IgG的制备取所需量的兔抗牛IgG，加入少许去离子水，用0.1Mol/LK2CO3溶液调pH值为9.0（用精密pH试纸测定），同时胶体金溶液的pH值也调至9.0。在磁力搅拌下，将20ml胶体金溶液加入至兔抗牛IgG中，继续搅拌10min，加入3.5ml3％的聚乙二醇（分子量20000）作为稳定剂，以使其最终浓度达到0.05％，再搅拌15min后，置4℃冰箱保存备用。
4．金标兔抗牛IgG的纯化将金标记的兔抗牛IgG以2500r/min离心15min，以除去胶体金的聚合物，取上清以65000g离心1h，可见离心物分为三层，上层为淡黄色，含有未结合的兔抗牛IgG，下层为近黑色，是尚未结合的胶体金颗粒,最主要的中间层为红色，是结合良好的金标记的兔抗牛IgG，倾去上层，收集中层液，用含0.1％BSA的0.01Mol/LpH8.2PB混合至原体积的1／10，过滤除菌，分装，4℃保存备用。
5．金标记兔抗牛IgG的鉴定
（1）颗粒大小及均匀度鉴定：取少许金标记的兔抗牛IgG，负染，电镜观察颗粒大小及均匀度，并测量粒子直径大小。
（2）活性鉴定：将牛IgG点样于硝酸纤维膜上，直接加金标兔抗牛IgG抗体，应显示出明显的粉红色斑点。
6．正式试验程序
（1）点样以打孔器将微孔滤膜制成直径3mm的膜片。将牛结核PPD用0.01Mol/LpH9.0PBS液稀释为40µg/ml，用微量加样器加1µl抗原于膜片中央，37℃烘干10min。
（2）封闭将膜片置于0.01Mol/LpH7.4含0.2％BSA的PBST液中，37℃作用45min，其间振荡数次。取出后以蒸馏水洗涤1次，用滤纸吸干。
（3）加待检血清待检血清以PBST液做1︰160倍稀释。将膜片浸入其中，37℃作用1h，其间振荡数次。取出后，以PBST液洗涤后，滤纸吸干。此步同时设标准阳性血清和阴性血清对照。
（4）加金标抗体以PBST液将金标液作1︰10稀释，将膜片浸入其中，37℃作用2h，中间振荡数次。
（5）银染将膜片从金标液中取出，于去离子水洗涤3次，每次3min。然后将膜片浸入暗室中的银染色液中，室温下作用10min，移入定影液中，室温作用5min。然后用去离子水冲洗，自然干燥后观察结果。
（三）结果判定：
＋＋＋～＋＋＋＋：呈棕褐色或黑色斑点，着色深，均匀一致，与背景反差大。
＋＋：着色较深或着色很深，但背景色也较深。
＋：着色淡，或着色较深，但有背景色。
－：没有着色，或与背景色没有反差。
出现“++”以上，判为阳性结果，否则判为阴性结果。
