CatalogueProducts小鼠抗双链RNA (J2)小鼠抗双链RNA (J2)Catalog编号：10010500CloneJ2IsotypeIgG2a kappaProduct TypeMonoclonal AntibodyUnits500 µgHostMouseApplicationDot blotdsRNA-immunoblottingELISAFlow CytometryImmuno-affinity-chromatographyImmunocytochemistryImmunohistochemistry

背景在过去十年中，我们的双链 RNA (dsRNA) 抗体已被广泛用于检测并使用 dsRNA 基因组或中间体表征植物和动物病毒。此外，抗 dsRNA 抗体可用作检测病原体的诊断工具，包括检测石蜡包埋的固定组织样本 (Richardson et al. 2010)。 J2抗dsRNA IgG2a单克隆抗体已成为dsRNA检测的金标准。它最初用于研究植物病毒，但自 Weber 等人的开创性论文以来。 2006 年，J2 用于 sh由于所有测试的正链 RNA 病毒在感染细胞中产生了大量的 dsRNA，该抗体已广泛用于各种系统，如 200 多份科学出版物中所述。J2 可用于检测病毒的 dsRNA 中间体，如多种多样，如丙型肝炎病毒、登革热病毒、鼻病毒、基孔肯雅病毒、狂犬病病毒、脊髓灰质炎病毒、经典猪瘟病毒、雀麦花叶病毒等，存在于培养细胞和固定石蜡包埋的组织学样本中。J2 已被用于阐明抗病毒反应是如何启动的，病毒采取了什么反策略来避免它们，并通过对病毒核酸复制位点进行超微结构定位研究来探索病毒的生命周期（Welsch 等人，2009 年和 Knoops 等人， 2011).J2 已成功用于电子显微镜、免疫荧光显微镜、免疫组织化学和各种免疫捕获方法，如斑点印迹和 ELISA。杰2 也被推荐作为一种诊断工具来检测未知病原体是细菌还是病毒（Richardson 等人，2010 年）。最近，J2 还被用于监测从体外合成的 mRNA 制剂中去除 dsRNA，这可能在基因治疗中具有潜在用途（Kariko 等人，2011 年）。

同义词:Mouse anti dsRNA

SourceFemale DBA/2 小鼠腹膜内注射 50 ug L-dsRNA 和 75 ug 甲基化牛血清白蛋白的混合物，在完全弗氏佐剂中乳化。在多次加强后，脾细胞与 Sp2/0-Agl4 骨髓瘤细胞融合以产生杂交瘤克隆。

ProductMouse 单克隆抗体 J2 可识别双链 RNA (dsRNA)，前提是螺旋长度大于或等于 40 bp。 dsRNA 识别与抗原的序列和核苷酸组成无关。迄今为止调查的所有天然存在的 dsRNA（40-50 种）作为以及 poly(I).poly(C) 和 poly(A).poly(U) 已被 J2 识别，尽管在某些测定中其对 poly(I).poly(C) 的亲和力比后者低约 10 倍与其他 dsRNA 抗原

配方：冻干样品应用 500 µl 无菌蒸馏水重新配制。然后，mAb 将处于不含任何稳定剂的 PBS 中，浓度为 1 毫克/毫升。由于冻干过程，重组抗体可能含有少量聚集体形式的变性蛋白质，这可能会干扰某些应用，例如免疫组织化学（例如通过提供高背景）。因此，我们强烈建议在使用前离心（微量离心机）重组抗体并使用上清液。

纯化方法：蛋白 A-琼脂糖亲和层析。

纯度：凝胶电泳纯 IgG 抗体。

浓度：重构后的浓度：1.00 mg/ml，由 A280 nm 测定（A280 nm = 1.47 对应于 1 mg/ml 抗体）。

ApplicationsMouse monoclonal抗体 J2 可用于 ELISA、dsRNA 免疫印迹、免疫亲和层析，在某些系统中也可用于免疫组织化学（参见参考资料）。对于任何特定应用，抗体的最佳工作稀释度应通过滴定确定。请注意，dsRNA 免疫印迹之前的核酸分离必须通过聚丙烯酰胺凝胶电泳进行，因为从琼脂糖凝胶上印迹后检测的灵敏度会大大降低。不适用于临床目的。仅供体外使用。

储存重构抗体后应分装并储存在 -20 °C 或 -70°C。加入 10 mM 叠氮化钠后，未稀释的抗体也可储存在 +4 °C很短的时间。用于长期储存e mAb 应冷冻保存。应避免反复冷冻/解冻循环。当保持冻干时，产品将在 -20°C 或 -70°C 下保持稳定 10 年。

运输条件：在环境温度下运输。

警告本产品仅供研究使用，并用于体外测试，不适用于涉及人类或动物的诊断或治疗程序。它可能含有有害成分。请参阅安全数据表 (SDS) 了解更多信息和正确的处理程序。根据当地法规处理产品残留物。本数据表尽可能准确，但 Exalpha Biologicals 对本信息中的任何不准确或遗漏不承担任何责任。

参考资料1) F. Weber, V. Wagner, S. B. Rasmussen、R. Hartmann、S. R. Paludan。双链 RNA 由正链 RNA 病毒和 DNA 病毒产生，但不能被 n 检测到负链 RNA 病毒。 J Virol (2006), 80(10):5059-64。 doi: 10.1128/JVI.80.10.5059-5064.2006.2) S. Welsch, S. Miller, I. Romero-Brey, A. Merz, C. K. E. Bleck, P. Walther, S. D. Fuller, C. Antony, J. Krijnse-储物柜，R. Bartenschlager。登革热病毒复制和组装位点的组成和三维结构。细胞宿主与微生物 (2009) 5(4)； 365-375。 doi.org/10.1016/j.chom.2009.03.007。 3) K. Knoops、M. Bárcena、R. W. Limpens、A. J. Koster、A. M. Mommaas、E. J. Snijder。动脉病毒复制结构的超微结构特征：重塑内质网以适应病毒 RNA 合成。 J病毒。 (2012) 86(5); 2474-2487。 doi:10.1128/JVI.06677-11.4) S. J. Richardson、A. Willcox、D. A. Hilton、S. Tauriainen、H. Hyoty、A. J. Bone、A. K. Foulis、N. G. Morgan。使用针对 dsRNA 的抗血清检测福尔马林固定石蜡包埋组织中的病毒感染。 J 临床病毒。 (2010) 49(3); 180-5。 doi: 10.1016/j.jcv.2010.07.015.5) K. Karikó、H. Muramatsu、J. Ludwig、D. Weissman，生成用于治疗的最佳 mRNA：HPLC 纯化消除免疫激活并改善核苷修饰的蛋白质编码 mRNA 的翻译，核酸研究 (2011) 39 (21); e142, https://doi.org/10.1093/nar/gkr695.6) Schönborn, J., Oberstrass, J., Breyel, E., Tittgen, J., Schumacher, J. 和 Lukacs, N. (1991)双链 RNA 的单克隆抗体作为粗核酸提取物中 RNA 结构的探针。核酸 Res.19, 2993-3000。 7) Lukacs, N. (1994) 通过针对双链 RNA 的单克隆抗体检测植物中的病毒感染和区分共存病毒。 J.病毒。方法 47、255-272。 8) Lukacs, N. (1997) 通过结构特异性抗 RNA 抗体检测有义：反义双链体。在：反义技术。实用方法，C. Lichtenstein 和 W. Nellen（编），第 281-295 页。 IRL Press, Oxford.Recent publication: Tirosh Shapira, I. Abrrey Monreal, Sébastien P Dion, Mason Jager, Antoine Désilets, Andrea D Olmstead, Thierry Vandal, David W Buchholz, Brian Imbiakha, Guang Gao, Aaleigha Chin, William D Rees, Theodore Steiner, Ivan Robert Nabi, Eric Marsault, Julie Sahler, Avery August, Gerlinde Van de Walle、Gary R Whittaker、Pierre-Luc Boudreault、Hector C Aguilar、Richard Leduc、François Jean。一种新型高效 TMPRSS2 样蛋白酶抑制剂可阻断令人担忧的 SARS-CoV-2 变体，并广泛保护小鼠免受感染和死亡。 bioRxiv 2021.05.03.442520； doi：https://doi.org/10.1101/2021.05.03.442520https://biorxiv.org/cgi/content/short/2021.05.03.442520v1

该产品的安全数据表：SDS不含叠氮化钠的抗体 Exalpha_V1.0

小鼠抗双链 RNA (J2)

$799.00

加入购物车SKU：10010500 分类：一抗, 一抗, 单克隆抗体图 1. 抗体 j2（1:250 稀释度，4 微克/毫升）揭示了 dsrna（绿色标记）和丙型肝炎病毒核心蛋白（红色标记）的共定位，指示假定的病毒组装站点的位置（箭头）。图 2. 使用 j2 抗体的免疫荧光显微镜显示 dsrna（标记为红色），a感染登革热病毒的 huh-7 细胞中病毒复制复合物的标记。细胞 dna 用 dapi（蓝色）标记。图取自 anwar 等人。 (2011) plos one 6:e23246. 图 3. 免疫电子显微镜图像，其中 j2 抗体标记显示 sars-cov 感染的 vero e6 细胞的双膜囊泡 (dmv) 中存在大量 dsrna（黑点），在感染后 7 小时固定。使用与蛋白 a 结合的免疫金检测 j2。g：高尔基复合体，m：线粒体a，n：细胞核。图取自 knoops 等人。 (2008) plos biol 6:e226.图 4. j2 抗体用于斑点印迹，以检测利什曼原虫寄生虫 l. guyanensis 中来自利什曼原虫 rna 病毒 (lrv) 的 dsrna。显示了 lrv 阳性和阴性对照菌株（分别为 lg4147lrvhigh 和 lg4147lrvneg）的 1000 到 10 个寄生虫的连续稀释。图片来自 zangger 等人。 (2013) plos negl trop dis 7:e2006.

图 1. 抗体 j2（1:250 稀释度，4 微克/毫升）揭示了 dsrna（标记为绿色）和丙型肝炎病毒核心蛋白 (标记为红色），表示假定的病毒组装位点（箭头）的位置。

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图 2. 使用 j2 抗体的免疫荧光显微镜显示 d感染登革热病毒的 huh-7 细胞中的 srna（红色标记）是病毒复制复合物的标记。细胞 dna 用 dapi（蓝色）标记。图取自 anwar 等人。 (2011) plos one 6:e23246.

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图 3. 免疫电子显微镜图像，其中 j2 抗体标记显示 sars-cov 感染的 vero e6 细胞的双膜囊泡 (dmv) 中存在大量 dsrna（黑点），在感染后 7 小时固定。使用与蛋白质结合的免疫金检测 j2n a. g：高尔基复合体，m：线粒体，n：细胞核。图取自 knoops 等人。 (2008) plos biol 6:e226.

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图 4. j2 抗体在点印迹中用于检测利什曼原虫寄生虫 l. guyanensis 中来自利什曼原虫 rna 病毒 (lrv) 的 dsrna。显示了 lrv 阳性和阴性对照菌株（分别为 lg4147lrvhigh 和 lg4147lrvneg）的 1000 到 10 个寄生虫的连续稀释。图片来自 zangger 等人。 (2013) plos negl trop dis 7:e2006.

class=\"c- ProductDetails__ProductImage\" src=\"https://exalpha-7d62.kxcdn.com/ProductImages/1001050010010500-Figure01.jpg\" alt=\"图 1. 抗体 J2（1:250 稀释度，4 微克/毫升）显示 dsRNA（绿色标记）和丙型肝炎病毒核心蛋白（红色标记）的共定位，指示位置假定的病毒组装位点（箭头）。” />图 1. 抗体 J2（1:250 稀释度，4 微克/毫升）揭示了 dsRNA（绿色标记）和丙型肝炎病毒核心蛋白（红色标记）的共定位，指示假定的病毒组装站点的位置（箭头）。图 2. 使用 J2 抗体的免疫荧光显微镜显示 dsRNA（标记为红色），a感染登革热病毒的 HuH-7 细胞中病毒复制复合物的标记。细胞 DNA 用 DAPI（蓝色）标记。图取自 Anwar 等人。 (2011) PLoS One 6:e23246. 图 3. 免疫电子显微镜图像，其中 J2 抗体标记显示 SARS-CoV 感染的 Vero E6 细胞的双膜囊泡 (DMV) 中存在大量 dsRNA（黑点），在感染后 7 小时固定。使用与蛋白 A 结合的免疫金检测 J2。G：高尔基复合体，M：线粒体a，N：细胞核。图取自 Knoops 等人。 (2008) PLoS Biol 6:e226.图 4. J2 抗体用于斑点印迹，以检测利什曼原虫寄生虫 L. guyanensis 中来自利什曼原虫 RNA 病毒 (LRV) 的 dsRNA。显示了 LRV 阳性和阴性对照菌株（分别为 Lg4147LRVhigh 和 LG4147LRVneg）的 1000 到 10 个寄生虫的连续稀释。图片来自 Zangger 等人。 (2013) PLoS Negl Trop Dis 7:e2006.

图 1. 抗体 J2（1:250 稀释度，4 微克/毫升）揭示了 dsRNA（标记为绿色）和丙型肝炎病毒核心蛋白 (标记为红色），表示假定的病毒组装位点（箭头）的位置。

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图 2. 使用 J2 抗体的免疫荧光显微镜显示 d感染登革热病毒的 HuH-7 细胞中的 sRNA（红色标记）是病毒复制复合物的标记。细胞 DNA 用 DAPI（蓝色）标记。图取自 Anwar 等人。 (2011) PLoS One 6:e23246.

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图 3. 免疫电子显微镜图像，其中 J2 抗体标记显示 SARS-CoV 感染的 Vero E6 细胞的双膜囊泡 (DMV) 中存在大量 dsRNA（黑点），在感染后 7 小时固定。使用与蛋白质结合的免疫金检测 J2n A. G：高尔基复合体，M：线粒体，N：细胞核。图取自 Knoops 等人。 (2008) PLoS Biol 6:e226.

图 1. 抗体 j2（1:250 稀释度，4 微克/毫升）揭示了 dsrna（绿色标记）和丙型肝炎病毒核心蛋白（红色标记）的共定位，指示假定的病毒组装站点的位置（箭头）。图 2. 使用 j2 抗体的免疫荧光显微镜显示 dsrna（标记为红色），a感染登革热病毒的 huh-7 细胞中病毒复制复合物的标记。细胞 dna 用 dapi（蓝色）标记。图取自 anwar 等人。 (2011) plos one 6:e23246. 图 3. 免疫电子显微镜图像，其中 j2 抗体标记显示 sars-cov 感染的 vero e6 细胞的双膜囊泡 (dmv) 中存在大量 dsrna（黑点），在感染后 7 小时固定。使用与蛋白 a 结合的免疫金检测 j2。g：高尔基复合体，m：线粒体a，n：细胞核。图取自 knoops 等人。 (2008) plos biol 6:e226.图 4. j2 抗体用于斑点印迹，以检测利什曼原虫寄生虫 l. guyanensis 中来自利什曼原虫 rna 病毒 (lrv) 的 dsrna。显示了 lrv 阳性和阴性对照菌株（分别为 lg4147lrvhigh 和 lg4147lrvneg）的 1000 到 10 个寄生虫的连续稀释。图片来自 zangger 等人。 (2013) plos negl trop dis 7:e2006.

图 1. 抗体 j2（1:250 稀释度，4 微克/毫升）揭示了 dsrna（标记为绿色）和丙型肝炎病毒核心蛋白 (标记为红色），表示假定的病毒组装位点（箭头）的位置。

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图 2. 使用 j2 抗体的免疫荧光显微镜显示 d感染登革热病毒的 huh-7 细胞中的 srna（红色标记）是病毒复制复合物的标记。细胞 dna 用 dapi（蓝色）标记。图取自 anwar 等人。 (2011) plos one 6:e23246.

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图 3. 免疫电子显微镜图像，其中 j2 抗体标记显示 sars-cov 感染的 vero e6 细胞的双膜囊泡 (dmv) 中存在大量 dsrna（黑点），在感染后 7 小时固定。使用与蛋白质结合的免疫金检测 j2n a. g：高尔基复合体，m：线粒体，n：细胞核。图取自 knoops 等人。 (2008) plos biol 6:e226.

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图 4. j2 抗体在点印迹中用于检测利什曼原虫寄生虫 l. guyanensis 中来自利什曼原虫 rna 病毒 (lrv) 的 dsrna。显示了 lrv 阳性和阴性对照菌株（分别为 lg4147lrvhigh 和 lg4147lrvneg）的 1000 到 10 个寄生虫的连续稀释。图片来自 zangger 等人。 (2013) plos negl trop dis 7:e2006.

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