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重组病毒的蛋白质分析实验一基本方案
来自 : 蚂蚁淘
实验材料
试剂、试剂盒
仪器、耗材
实验步骤
1. 接种2.5×108Sf9细胞于含5ml完全培养液/10%胎牛血清的25cm2培养瓶中,27℃温育≥2h。从含无血清完全培养液和重组蚀斑的1ml病毒贮液中取0.5ml分别加入各个培养瓶。4℃保存剩余的0.5ml重组病毒,待以后用于蚀斑试验。

2. 培养瓶置27℃温育4~5天,毎天检查感染迹象。4~5天后,将培养液转移至15ml离心管中,收获病毒。
 
3. 于4℃1000g离心10min,将含有扩增病毒的上清转移至一支无菌15ml聚丙烯离心管中。
 
4. 接种2.5×106Sf9细胞于含5ml完全培养液/10%胎牛血清的25cm2培养瓶中。为每―待测病毒贮液准备一个培养瓶,另准备一个作为非感染对照。27℃温育≥2h,使细胞贴壁。弃去细胞培养液并向培养瓶中加入1.5ml扩增的病毒贮液,27℃温育2天。

5. 从塔养瓶中轻轻移去细胞以收获之,并将细胞和培养液转移至15ml聚丙烯离心管中。
 
6. 于4℃,1000g离心10min,如果目的蛋白是分泌型蛋白质,将培养上清移至一新管,进行步骤8。如果待研究蛋白是胞内蛋白,则弃上清,用PBS轻轻将细胞团块重悬洗涤,重复离心并弃上清。

7. 直接加入500μl1×SDS样品缓冲液,煮沸细胞团块,如因DNA的存在造成样品太粘稠,可超声裂解样品,持续超声处理直到粘性消除,然后转至步骤9。另一变通方法是用0.5ml补充了蛋白酶抑制剂的适当裂解缓冲液裂解细胞团块,4℃微量离心10min,澄清裂解物,将上清转移至一个新管。取0.1ml的各种裂解物加至100μl2×SDS样品缓冲液中,在沸水浴中煮沸3min,剩余裂解物冻存于-80℃,可保存数月。

8. 用Bradford的方法,确定培养物上清中分泌蛋白(步骤6)的浓度或细胞裂解物中细胞内蛋白(步骤7)的浓度。

9. 用下列方法中的一种分析每一样品中的蛋白质:
 
(1)免疫印迹:在单向SDS-聚丙烯酰胺凝胶上,每一泳道加入20~40μg细胞总蛋白。记住要包括非感染对照。

(2)考马斯亮蓝染色:在单向SDS-聚丙烯酰胺凝胶上,每一泳道加入20~40μg细胞总蛋白。如果重组病毒不纯,则只有在感染细胞中重组蛋白产量很高时才用此方法检测。

(3)功能分析:如迁移率变动的DNA结合分析,体外激酶分析(用于蛋白激酶),核苷结合分析(用于结合核苷的蛋白),胸苷掺入分析(用于生长因子蛋白质),或者任何用于检测目的蛋白的典型分析方法。

(4)重组蛋白的代谢标记。
 
10. 解释结果,以鉴定出哪一个假定的重组蚀斑是产生所需蛋白的重组子,将其进行蚀斑纯化,以使其免受任何野生型病毒污染。制备大量病毒毒种贮液,并测定重组病毒的滴度。
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