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想要做小鼠的活体成像,应该怎样做最好?
2021-08-12
问题描述:

查了有关文献:

1.2.5裸鼠皮下移植瘤模型的建立


裸鼠,6~7周龄,体重(20±2)g,雌性。取对数生长期的A549细胞和A549-luc细胞制备单细胞悬液,PBS调整细胞浓度为2.5×107/mL。经台盼蓝染色测定细胞活性后,取200μL悬液接种于裸鼠右背侧近腋部皮下,共接种3只。采用美国精诺真活体成像系统(IVIS200)观测皮下肿瘤细胞的生长情况。观测前每只鼠腹腔注射150μL30mg/mL荧光素底物,注射后10~25min进行活体成像。每周1次,连续4周。


1.2.6SCID鼠尾静脉移植瘤模型的建立


SCID小鼠,6~7周龄,体重为(20±2)g,雌性。取对数生长期A549细胞和A549-luc细胞制备单细胞悬液,PBS调整细胞浓度至2.5×107/mL。经台盼蓝染色测定细胞活性后,取200μL悬液尾静脉注射SCID鼠,共接种3只。采用美国精诺真活体成像系统(IVIS200)观测体内肿瘤的生长和转移情况。观测前每只鼠腹腔注射150μL30mg/mL荧光素底物,注射后10~25min进行活体成像。每3天1次,连续观察4周。

但是,我想问一下,这个活体成像的话,用哪种方式建模更好呢。活体成像一般是怎样收费的?图片出来的话,一般选取哪几个点弄比较好呢?谢谢大家!

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longmed
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以上诸多问题,我这里有文献和技术资料支持。请联系我。活体成像技术常见问题解答2017,1.pdf(302.24k)活体动物体内成像技术 2017,1.pdf(499.05k)活体生物发光和荧光成像技术应用讲座2017,1.ppt(18817.5k)
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LLC-GFP-luc小鼠肺癌细胞一、细胞名称LLC-GFP-luc二、组织小鼠肺癌细胞系三、母细胞来源ATCC四、转染方法与标记过程的描述慢病毒转染Hygromycin筛选(一)质粒部分1.酶切载体:pGL4.10(luc2)由酶切获得1400bp的luc2基因片断;EGFP片段由PCR扩增获得700-800bp左右片段;pSin-hyg-T2A载体酶切线性化。2.电泳和胶回收:上述酶切产物DNA电泳,TAKARA试剂盒胶回收,回收产物取少量电泳鉴定。3.连接载体与目的片段:使用InvitrogenT4连接酶连接luc2、EGFP片段和pSin-hyg-T2A线性化载体,连接使用20ul体系,25℃,10min。4.转化:感受态菌OneShotStbl3在冰上融化后,加入连接产物,静置25min后在水浴42℃,45sec热休克,后加入250ul无抗培养基225转摇菌1h,将转化的菌铺于有氨苄抗性平板37度过夜。5.挑取单克隆:观察平板后挑取15个单克隆至含2ml氨苄抗性LB培养基摇菌管中,255转摇菌6.5h。6.小抽质粒与鉴定:使用碱裂解法小抽,质粒用25ul含RNA酶ddH2O溶解;酶切鉴定:重组质粒用通过酶切鉴定。7.荧光素表达鉴定:重组质粒pSin-hyg-GFP/luc2(以下简称Gluc)转染293T细胞:DNA定量后,使用PEI转染Gluc至24孔板已预铺的293T细胞中。转染采用脂质体法转染,试剂采用JetPEI(Polyplus公司)。两管EP管中分别加入50ul生理盐水,其中一管加入1ug量的质粒(DNA体积=1ug/DNA浓度),轻轻震荡混匀,再轻微离心;在另一管中加入PEI2ul轻轻震荡混匀,轻微离心,然后把PEI管中的溶液加入含有的质粒管中,室温孵育20min。将脂质体包绕DNA的混合液加入需要转染的24孔内,37℃、5%CO2条件下培养,8小时后换培养液。8.报告基因检测:PassiveLysisAgent裂解细胞,加入荧光素酶作用底物,将转染质粒的细胞与阴性,阳性对照共同进行单报告基因检测。9.质粒中抽:取1ml转染报告基因检测正确的菌液加入100ml氨苄抗性的LB培养基中摇菌过夜,使用Invitrogen试剂盒中抽,产物电泳鉴定,-20℃保存。(二)慢病毒包装部分1.质粒共转染细胞:转染前一天,293T在10cm培养盘中的细胞达到90%,胰酶消化后,1:3传入新10cm培养盘中。转染时,细胞在培养盘中密度达到80%。采用脂质体PEI转染法使编码慢病毒包膜蛋白的质粒VSVG,PackagingMix以及构建的Gluc质粒15µg共转染。6h后换新鲜DMEM培养基。2.提取病毒上清:转染48-72hours后,将含有病毒液的培养基转移到15ml离心管中,在低温4摄氏度条件下,3000rpm,离心10min去除片状沉淀的细胞碎片。3.浓缩病毒:将病毒上清用0.45um滤器过滤至浓缩离心管中,2000rpm,4℃,15min离心。浓缩液收集于500µl离心管中,-80℃保存。(三)慢病毒感染&筛选1.感染前一天(Day1),消化LLC细胞并计数,将细胞铺于24孔板中(以便在感染前细胞达到30%-50%的汇合度),37°C过夜孵化细胞。2.(Day2)解冻低温保存的慢病毒液,并且制备1:2病毒稀释液200µl加入细胞中。3.向每孔加入Polybrene达到终浓度6ug/ml,晃匀孔板,37度孵化过夜。4.(Day3)移去含有慢病毒的培养基,加入500µl完全培养基。5.(Day4)换液,加入300µg/mlHygromycin(Sigma)来选择稳定感染的细胞克隆。6.(Day4-7),每24h换液,300µg/mlHygromycin(Sigma)来选择稳定感染的细胞克隆。维持培养。7.(Day8-12)细胞逐渐由24孔板传入6孔板、6cm盘和10cm盘中100µg/mlHygromycin维持培养。8.LLC-Gluc细胞系鉴定:取5×104细胞,用PassiveLysis裂解液裂解,加入荧光素酶作用底物,将转染质粒的细胞与阴性,阳性对照共同进行单报告基因检测。GFP表达通过荧光显微镜观察。五、培养条件:置于37℃、5%CO2培养箱中,用含10%胎牛血清(FBS;Hyclone,Tauranga,NewZealand)和1%双抗(100U/ml青霉素和100μg/ml链霉素,Hyclone,Logan,UT,USA)的高糖DMEM培养基培养,培养2-3天(密度大概80%)按照1:3的比例传代。【注意事项】采用0.25%的胰酶消化,1-2分钟。消化得比较快。六、细胞传代所需时间:3天/代七、筛选标记维持压力和选择压力:Hygromycin100ug/ml和300ug/ml。
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longmed以上诸多问题,我这里有文献和技术资料支持。请联系我。你好,资料可以发给我吗?
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