Description
Q-PAGE™ Bis-Tris Precast Gel is a high-performance and easy to use precast polyacrylamide gel for electrophoresis in Bis-Tris buffer system (MOPS or MES). The optimized gel formula allows Q-PAGE™ Bis-Tris Precast Gel to show improved resolution, accurate results, and an extended shelf-life over conventional Tris-Glycine gels.
Q-PAGE™ Bis-Tris Precast Gels are available in gradient (4 to 12%) and fixed (8% and 12%) concentrations of polyacrylamide in 12-and 15-well formats. Two available cassette sizes, Mini (10 x 8.3 cm) and Midi (10 x 10 cm), are compatible with most popular protein electrophoresis systems. Q-PAGE™ Mini (QP2XXX) Gels are suitable for Bio-Rad® and other systems. Q-PAGE™ Midi (QP3XXX) Gels are suitable for Invitrogen® XCell SureLock® Mini-Cell, Invitrogen® Mini Gel Tank, Hoefer SE260, and other systems.
Key Features
User-friendly gel cassette:
Numbered and framed wells for sample loading
Labeled warning sign and green tape as reminder
Enhanced gel performance:
Enhanced band sharpness
Better resolution of small proteins
Stable for shipping at ambient temperature
Easy compatibility:
Available as homogeneous and adjusted gradient gels for a wide range of protein separation.
Compatible with most popular protein electrophoresis systems
Storage and stability
Store Q-PAGE™ Precast Gels at 4°C for periods up to 12 months.
Do not freeze Q-PAGE™ Precast Gels. Remove tape and comb before electrophoresis.
Clear and sharp bands, high resolution
Q-PAGE™ Bis-Tris Precast Gel shows high resolution of protein separation.
QP2510 Specifications
Gel | Bis-Tris | |
Buffer systems | MOPS and MES | |
Features | Clear and sharp bands, high resolution | |
Cassette size | Mini Gel (10 X 8.3 cm) | |
Gel dimensions
| 8.1 x 7.4 x 0.1 cm (W x L x thickness) cm | |
Electrophoresis system | Bio-Rad systems | |
Well format & Capacity | 12 wells, 25 μl/well | |
Gel percentage | 4-12 % | |
Accessory tray | Production description Tip card Gel remover Cassette opener |
Manual
Manual_Q-PAGE™ Bis-Tris Precast Gel, Mini
SDS
SDS_Q-PAGE™ Precast Gel
Migration pattern
Setting Up and Running Q-PAGE™ Mini Precast Gel
Removing Q-PAGE Mini Gel from cassette
Setting up gel/membrane sandwich for Western transfer
Recommendations/Tips for Gel Running
1. Remove comb and tape before adaption. 2. Use fresh 1X running buffer for the inner cathode chamber. 3. Do not use Tris-Glycine running buffer for Q-PAGE™ Bis-Tris Precast Gels. 4. Rinse the wells before sample loading.
Sample Preparation for SDS-PAGE
1. Mix protein sample with 2X sample buffer.
2. Heat the diluted samples at 95°C for 5 min or at 70°C for 10 min.
3. Cool the diluted samples to 4°C and spin down the water condensed on tube surface. (If there is high viscosity part at bottom of tube, transfer supernatant to a new tube.)
Prepare Q-PAGE™ for Sample Loading
1.Open the blister tray of Q-PAGE™ Precast Gel.
2.Briefly rinse the gel cassette with ddH2O.
3.Remove tape and comb; avoid squeezing the gel.
4.Adapt Q-PAGE™ to electrophoresis system; instruction are provided below. (BioRad Mini-PROTEAN® Core Electrophoresis System is recommended.)
5.Use a pipette to gently wash the wells with running buffer to remove residual storage buffer.
6.Fill the wells with running buffer prior to sample loading.
7.Load samples and pre-stained protein marker into numbered wells.
8.Fill both inner and outer chambers with running buffer to the highest level. Ensure gel wells are completely covered.
Power Setting for Running Q-PAGE™
Optimize the voltage and running time if needed.
| 130 V | 180 V | 230 V*2 |
Running Time*1 | 45-60 mins | 25-40 mins | 15-30 mins |
Expected Current Initial (per gel) Final (per gel) |
60-70 mA 20-25 mA |
100-110 mA 40-50 mA |
130-140 mA 60-70 mA |
Expected temperature | 25-30°C | 25-35 °C | 35-45°C |
*1 Set voltage higher than 100 V is recommended.
*2 For higher voltage conditions, please use fresh running buffer for inner and outer chambers.
*3 Running time varies depending on gel percentage, running buffer, temperature, and power supply
Remove Q-PAGE™ Gel from Cassette
Open cassette immediately after electrophoresis. Avoid gel drying.
1.Insert the cassette opener into corners of cassette.
2.Sequentially pry the opener to separate the two plates.
3.Gently pull two plates apart from the top of cassette.
4.Carefully detach the gel either from the bottom of gel or the top side of the cassette.
-Avoid diagonally peeling the gel from the corner.
-Use water to help gel detachment if it needed
5.Gently remove the gel for further staining or Western blotting.
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Q-PAGE™ Precast Gel
Gel Type | Bis-Tris | TGN (Tris-Glycine-Novel) | ||||||
Buffer systems | MOPS and MES | Tris-Glycine (Laemmli) | ||||||
Features | Clear and sharp bands, high resolution | Quick running, clear bands | ||||||
Cassette size | Mini Gel(10 x 8.3 cm) | Midi Gel(10 X 10 cm) | Mini Gel(10 x 8.3 cm) | Midi Gel(10 X 10 cm) | ||||
Electrophoresis system | Bio-Rad systems | Mini Gel Tank Xcell SureLock, Hoefer SE260 | Bio-Rad systems | Mini Gel Tank Xcell SureLock, Hoefer SE260 | ||||
Well format & Capacity | 12 wells, 25 μl/well | 15 wells,22 μl/well | 12 wells, 40 μl/well | 15 wells, 28 μl/well | 12 wells, 25 μl/well | 15 wells, 22 μl/well | 12 wells, 40 μl/well | 15 wells, 28 μl/well |
Gel percentage/ Cat. No. | 8% | 8% | 8% | 8% | 10% | 10% | 10% | 10% |
QP2110 | QP2120 | QP3110 | QP3120 | QP4210 | QP4220 | QP5210 | QP5220 | |
12% | 12% | 12% | 12% | 4-15% | 4-15% | 4-15% | 4-15% | |
QP2310 | QP2320 | QP3310 | QP3320 | QP4510 | QP4520 | QP5510 | QP5520 | |
4-12% | 4-12% | 4-12% | 4-12% |
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QP2510 | QP2520 | QP3510 | QP3520 |
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ExcelBand™ Protein Markers
Ready-to-use— premixed with a loading buffer for direct loading, no need to boil
Broad range— 310 kDa to 5 kDa
Pre-stained bands — for monitoring protein separation during electrophoresis and Western blotting transferring efficiency on membrane
Enhanced bands— for quick reference
YesBlot™ Western Marker I
Ready-to-use — no need of mixing or heating before sample loading
Direct visualization — 10 IgG-binding proteins for direct visualization on Western blots
Pre-stained bands — 4 pre-stained proteins for monitoring protein separation during electrophoresis and Western blotting transferring efficiency on membrane
Wide range — 10 clear bands from 15 to 200 kDa for size estimation
Quick reference — two enhanced bands (30 and 80 kDa)
FluoroStain™ Protein Fluorescent Staining Dye
Compatible to MASS analysis — compatible to the analysis of mass spectra, such as LC-MS/MS, MALDI-TOF, and etc.
High sensitivity — detection level achieve ~3 ng, similar to silver staining
Substitution of the Coomassie Blue protein staining method
ebiomall.com
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查了有关文献:
1.2.5裸鼠皮下移植瘤模型的建立
裸鼠,6~7周龄,体重(20±2)g,雌性。取对数生长期的A549细胞和A549-luc细胞制备单细胞悬液,PBS调整细胞浓度为2.5×107/mL。经台盼蓝染色测定细胞活性后,取200μL悬液接种于裸鼠右背侧近腋部皮下,共接种3只。采用美国精诺真活体成像系统(IVIS200)观测皮下肿瘤细胞的生长情况。观测前每只鼠腹腔注射150μL30mg/mL荧光素底物,注射后10~25min进行活体成像。每周1次,连续4周。
1.2.6SCID鼠尾静脉移植瘤模型的建立
SCID小鼠,6~7周龄,体重为(20±2)g,雌性。取对数生长期A549细胞和A549-luc细胞制备单细胞悬液,PBS调整细胞浓度至2.5×107/mL。经台盼蓝染色测定细胞活性后,取200μL悬液尾静脉注射SCID鼠,共接种3只。采用美国精诺真活体成像系统(IVIS200)观测体内肿瘤的生长和转移情况。观测前每只鼠腹腔注射150μL30mg/mL荧光素底物,注射后10~25min进行活体成像。每3天1次,连续观察4周。
但是,我想问一下,这个活体成像的话,用哪种方式建模更好呢。活体成像一般是怎样收费的?图片出来的话,一般选取哪几个点弄比较好呢?谢谢大家!
Luciferase
)
标记细胞或
DNA
,而荧光技术则采用绿色荧光蛋白、红色荧光蛋白等荧光报告基因和
FITC
、
Cy5
、
C
y7
等荧光素及量子点
(quantumdot
,
QD)
进行标记。
小动物活体成像技术是采用高灵敏度制冷
CCD
配合特制的成像暗箱和图像处理软件,使得可以直接监
控活体生物体内的细胞活动和基因行为。实验者借此可以观测活体动物体内肿瘤的生长及转移、
感染性
疾病发展过程、特定基因的表达等生物学过程。
由于具有更高量子效率
CCD
的问世,使活体动物体内光学成像技术具有越来越高的灵敏度,对肿瘤微
小转移灶的检测灵敏度极高;另外,该技术不涉及放射性物质和方法,非常安全。因其操作极其简单、
所得结果直观、
灵敏度高、
实验成本低等特点,
在刚刚发展起来的几年时间内,
已广泛应用于生命科学、
医学研究及药物开发等方面
1、有那些品牌的可以选择?我了解的大概有GE、kodak、CRi。还有其他的厂商吗?都有些什么型号。各有什么特点。
2、询价,各个型号的价钱是多少?
3、从敲定到拿到货能用的时间大约是多少?
与传统技术相比,活体荧光成像技术不需要杀死动物,可以对同一个动物进行长时间反复跟踪成像,既可以提高数据的可比性,避免个体差异对试验结果的影响;又可以了解标记物在动物体内的分布和代谢情况,避免传统体外实验方法的诸多缺点;特别是还可以用原生态的方法来研究问题,即研究对象不需要先行标记,其后用荧光标记物来研究其行为,观察结果真实可靠。
那如何选择自己最合适的活体荧光成像系统呢?本文试从以下几点来进行分析。
1、 荧光标记的选择
活体荧光成像技术主要有三种标记方法:荧光蛋白标记、荧光染料标记和量子点标记。荧光蛋白适用于标记肿瘤细胞、病毒、基因等。通常使用的是GFP、EGFP、RFP(DsRed)等。荧光染料标记和体外标记方法相同,常用的有Cy3、Cy5、Cy5.5及Cy7,可以标记抗体、多肽、小分子药物等。量子点标记作为一种新的标记方法,是有机荧光染料的发射光强的20倍,稳定性强100倍以上,具有荧光发光光谱较窄、量子产率高、不易漂白、激发光谱宽、颜色可调,并且光化学稳定性高,不易分解等诸多优点。量子点是一种能发射荧光的半导体纳米微晶体,尺寸在100nm以下,它可以经受反复多次激发,而不像有机荧光染料那样容易发生荧光淬灭。
但是不同荧光波长的组织穿透力不同,如图1所示,各种波长的光对小鼠各种器官的透过率,都在波长>600nm时显著增加。而如图2所示,在650nm-900nm的近红外区间,血红蛋白、脂肪和水对这些波长的光的吸收都保持在一个比较低的水平。因而,选择激发和发射光谱位于650nm-900nm的近红外荧光标记(或至少发射光谱位于该区间),更有利于活体光学成像,特别是深层组织的荧光成像。(推荐文献: Nature Method, 2005, 2: 12 如何选择合适的荧光蛋白; Science, 2009, 324: 804 钱永建教授研究成果-近红外荧光蛋白,非常适合活体荧光成像)。
2、 活体荧光成像CCD的选择
选择适当的CCD镜头,对于体内可见光成像是非常重要的。如何选择活体荧光性价比最高的CCD呢?CCD有一些重要的参数:
1) CCD 像素。CCD像素决定成像的图片质量,像素越高,成像质量越好。由于荧光背景光较强,产生非特异性杂光干扰明显,需要配有高分辨率CCD的相机。
2) 前照式还是背照式CCD。一般而言,背照式CCD具有更高的量子效率,但是只有在检测极弱光信号优势明显(如活体生物发光成像),但在强光检测中与前照式CCD无本质差别,还更容易光饱和,并且其成本较高的弱势使其不属于荧光检测常规要素。
3) CCD 温度。制冷CCD分为两种:恒定低温制冷CCD和相对低温制冷CCD。恒定低温制冷CCD拥有稳定的背景,可以进行背景扣除;而相对低温制冷CCD由于背景不稳定,一般不能进行有效的背景扣除。CCD制冷温度越低,产生的暗电流越小,如图3所示,当制冷温度达到-29℃时,产生的暗电流已经低至0.03e/pixel/s。由于仪器自身产生的噪音主要由暗电流热噪音和CCD读取噪音组成,而目前CCD读取噪音最低只能降至2e rms;因而更低温度的CCD并不能明显的降低背景噪音,而成本却极大提高。
4) CCD 读取噪音和暗电流。CCD读取噪音和暗电流热噪音是成像系统产生背景噪音的主要因素,但是 在荧光成像中,最主要的背景噪音却是来自于荧光背景光。荧光成像信噪比的改善主要依赖于荧光背景光的有效控制和背景扣除技术(图4)。
3 、自发荧光的干扰
在活体荧光成像中,动物自发荧光一直困扰着科研工作者。在拥有激发光多光谱分析功能的活体成像系统出现以前,科学家们被迫采取各种方法来减少动物自发荧光,比如:采用无荧光素鼠粮饲养小鼠、使用裸鼠等。现在,拥有激发光多光谱分析功能的活体成像系统,能够轻松进行荧光信号的拆分,如图5,食物、膀胱、毛发和皮肤的自发荧光能够被有效的区分和剥离。激发光多光谱分析也可用于多重荧光标记检测,实现一鼠多标记,降低实验成本,并有效提高数据的可比性。
4、 荧光信号的准确定位
如图6所示,如果信号和靶标100%重合,这是科学家所追求的;但是,如果信号并不和靶标重合,而又误以为正确定位时,这是科学的噩梦。也许,一个错误定位的信号,比没有信号更加糟糕!
而同时拥有结构成像(如X光、MRI)和功能成像功能(如荧光、发光、同位素)的多功能活体成像系统,则让您摆脱困境,准确定位荧光信号。如图7所示,小鼠的X成像经过胃肠造影,可清晰地获得胃肠的形状和位置,将荧光信号和X光叠加,荧光和胃肠重合,可准确判定荧光定位在胃肠。
美国UVP凝胶成像分析系统
主要特征
◆ 多款CCD可供用户选择搭配,适用于所有成像实验对摄像系统的要求
◆ F 1.2保证大进光量和高成像速度
◆ 自动调焦,软件控制进行焦距、光圈、滤光片和放大缩小等功能调节
◆ 暗箱密闭性非常好,给化学发光成像提供了最佳条件
◆ 凝胶视窗,装有保护玻璃,无需开门便可快速观察样品
◆ USB接口,使数据快捷而简便传输
◆ 当暗箱门打开,安全保险机制自动关闭透射仪,保证无紫外泄露
◆ 样品台可以由软件控制上下调节,寻找最佳拍摄效果,同时可以记录上次拍摄位置
◆ 提供最好的重现性
◆ 根据不同发射波长要求,采取了五位滤片轮设计,由软件控制滤光片的变换
◆ 可选配外接卤素光源,配置不同的激发光滤光片用于不同荧光成像分析
VisionWorksLS图像采集和分析软件
VisionWorksLS是一套成熟的图像采集及分析软件,其中包含多种工具使拍摄化学发光,荧光,或者比色实验 (染色胶、菌落、斑点和膜)的图像更加简单快捷.
功能包括:
◆ 多种图像拍摄方式一键式图像拍摄、连续拍摄、动态模式拍摄
◆ 图像优化,添加注释
◆ 1D分析、密度分析和菌落计数
◆ 多用户权限设置,保证软件数据安全
◆ 用户可自定义模板与参数设定
◆ 生成报告
◆ 符合FDA 21 CFR Part 11 方式表达
◆ 数据报告可直接生成Excel电子表格
分析功能的应用:
◆ 1D 电泳凝胶分析
◆ Dot blot 分析
◆ 活体动物及植物分析
◆ 菌落计算
◆ 分子量定量
◆ GFP 表达分析
◆ 蛋白定量分析
◆ PCR 基因表达
◆ PCR 定量
◆ TLC 分析
◆ Western blot 密度分析
作用:
小动物活体成像
肿瘤研究
癌症研究
心脏病
基因治疗
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