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单克隆抗体的腹水制备实验一基本方案
来自 : 蚂蚁淘
实验材料
试剂、试剂盒
仪器、耗材
实验步骤
1. 用20G或22G的注射针,小鼠腹膜内注射降植烷,每只鼠0.5~1ml,1周后接种细胞。
 
2. 在175cm2培养瓶中加完全DMEM-10/HEPES/丙酮酸钠培养液,进行杂交瘤细胞的培养,使细胞生长至对数期。
 
3. 将培养液转入50ml锥形离心管中,室温下500g离心5min。
 
4. 细胞重悬于50ml无菌的PBS或HBSS(不含FBS)中洗涤。然后室温下500g离心5min,弃上清。重复2次,然后细胞重悬于5ml的PBS或HBSS中。
 
5. 计数细胞,通过台盼蓝染色法确定细胞活力。
 
6. 用不含FBS的HBSS或PBS调整细胞浓度至2.5×102细胞/ml。
 
7. 用一个10ml的无菌的带22G针头的注射器,对裸鼠进行腹膜内注射2ml细胞,等待腹水形成(1~2周)。
 
8. 收获腹水。

(1)一只手抓住并固定小鼠,使其腹部皮肤绷紧。

(2)另一只手将一只18G的计头插入小鼠腹腔1~2cm深。

(3)进针部位为左下腹或右下腹,以避免刺入鼠上腹部的重要器官,以及腹中线处的主要大血管。

(4)令腹水滴入一只无菌的15ml聚丙烯锥形离心管中。
 
9. 于室温下,1500g离心腹水10min,收集上清,弃沉淀,将腹水存放于4℃,直到收集腹水的工作完成(在1周内)。
 
10. 再次收获腹水前,让小鼠再次积累腹水(2~3天),具体操作同步骤8,腹水的加工处理操作同步骤9。重复这个过程直到再没有腹水产生可供收集,或者小鼠健康状况不佳。此时,可处死小鼠

11. 把在几天内收集到的腹水汇集到一起,于56℃水浴45min进行热处理,如果凝块形成,可参照步骤9中方法去除之,然后再离心。

12. 采用适当的方法检测腹水中的MAb的滴度。
 
13. 按大于1:10的比例稀释MAb,并进行滤过除菌,滤膜孔径为0.45μm,分装并冻存于-70℃,避免反复冻融,可冻存数年之久。
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