实验方法原理 | 此方案是在对Neuhoff等的方法进行修订的基础上建立的(1988),包括考马斯亮蓝G250和蛋白质的结合。考马斯亮蓝G250可以结合碱性氨基酸如精氨酸、酪氨酸、赖氨酸和组氨酸,染料的胶体特性使产生的背景非常低。这一特性可以阻止考马斯亮蓝渗透凝胶,避免考马斯亮蓝R250染色时较长的脱色过程。胶体考马斯亮蓝通常用于染色凝胶,检测范围为8~50ng。 | ||||||
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实验材料 | 包含蛋白质样品的凝胶 试剂、试剂盒 | 考马斯亮蓝染料储备溶液固定液甘油甲醇 仪器、耗材 | 玻璃平皿或塑料平皿往复式或定轨式摇床 实验步骤 | 1.将凝胶置于玻璃或塑料培养皿中固定,轻轻摇动至少1h。 可将凝胶固定过夜。如果凝胶有标记,多个凝胶可在同一培养皿中固定,固定液的体积应足够大,以使所有凝胶都能自由移动。 2.移走固定液,在摇床上用水清洗凝胶10min。 3.弃去水,重复洗2次。 4.在洗第三次时,将4份考马斯亮蓝储备液和1份甲醇混合,以制备胶体考马斯亮蓝染液。 5.将凝胶放在100~300ml胶体考马斯染料内(染料的体积依胶的大小而定,确保染料覆盖凝胶)。在往复式或定轨式摇床上,轻摇过夜。 凝胶应在染料中放置足够长时间,其颜色会持续加深一直到第七天。 6.去除残留染料,将凝胶转移至盛有45~55°C双蒸水或去离子水的干净平皿中。 当水变色时弃去,再次用新的45~55℃的H2O轻轻摇晃清洗凝胶。重复几次,直到蛋白质带较凝胶背景变得明显,蛋白质将在清晰的背景上出现蓝色。 7.凝胶可用于扫描分析。扫描湿凝胶较好,因为若凝胶干燥易破裂,导致数据的丢失。 8.在干燥之前,将凝胶浸在5%甘油中30min,凝胶也可装在密封塑料袋内,储存于4°C。 |