细胞分离纯化技术一Percoll不连续密度梯度沉淀法分离纯化淋巴细胞和淋巴母细胞
实验方法原理 | Percoll是一种包有乙烯吡咯烷酮的硅胶颗粒。渗透压很低(<20mosm/kgH2O),粘度也很小,可形成高达1.3g/ml密度,采用预先形成的密度梯度时可在低离心力(200~1000g)于数分至数十分钟内达到满意的细胞分离结果。由于Percoll扩散常数低,所形成的梯度十分稳定。此外,Percoll不穿透生物膜,对细胞无毒害,因此广泛用于分离细胞、亚细胞成分、细菌及病毒,还可将受损细胞及其碎片与完好的活细胞分离。 | ||||||||
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实验材料 | Percoll 试剂、试剂盒 | PBS血清 仪器、耗材 | 试管注射器离心机 实验步骤 | 1. 不同浓度(密度)Percoll溶液的制备 先用9份Percoll与1份8.5%NaCl或1.5MPBS混合达到生理性渗透压,然后用生理溶液(0.85%NaCl或0.15MPBS)稀释到所需浓度。 Percoll浓度(%) 70 60 50 40 30 20 比重(g/ml) 1.090 1.077 1.067 1.056 1.043 1.031 2. 不连续密度梯度Percoll层的制备 先将试管壁用牛血清湿润,除去多余血清,这种预处理可使逐层叠加的Percoll液平稳沿管壁流下,使形成满意的界面。在制备过程中一般用长针头注射器从高密度向低密度逐层放置,有时相邻两层Percoll比重相差不大时,可将Percoll液放入注射器中,小针头斜面紧贴管壁,任其自然慢慢流下。 3. 装样 样品体积和细胞浓度根据不同细胞而异,一般加样体积不宜过大,细胞浓度也不可过高,否则会影响细胞的分离和回收。 4. 离心 一般采用离心力为400g,时间20~25min。由于多层Percoll之间密度差别不大,因此离心机加速、降速时要慢,要平稳。 5. 取样 当所要分离的细胞绝大部分在两层的界面时,可逐层去除Percoll液后收集界面部位的细胞;有时大部分细胞位于Percoll层中,则需要逐层收集。收获含有Percoll液的细胞经2次洗涤后可供培养或检测用。 其他 | 一、分离纯化细胞举例 1. 富含NK活性大颗粒淋巴细胞(LGL)的纯化 按顺序由下向上逐层加50%、47.5%、45%、42.5%和40%五种不同密度的Percoll,如用10ml试管(或塑料管)分离,每层Percoll约1.2~1.5ml,初步从外周血中分离的PBMC细胞1×108悬于1ml培基中,按要求装样、离心和取样。一般富含NK杀伤活性的LGL细胞位于42.5%与45%Percoll界面以及上下二层的Percoll液中。 2. 纯化淋巴母细胞和除去死细胞 分别叠加50%和30%Percoll液。收取经PHA(或其它抗原、有丝分裂原)刺激PBMC,或含有较高比例异型的PBMC(如肾综合征出血热患者),按要求装样、离心和取样。位于管底的淋巴细胞为小淋巴细胞;两层Fercoll之间为淋巴母细胞,纯度和回收率在80%以上,位于30%Percoll表面是死细胞。收获淋巴母细胞可进行表型、结构以及功能的研究。 二、人不同血细胞的漂浮密度 人不同血细胞的漂浮密度 细 胞 漂浮密度 红细胞 1.09-1.11 粒细胞 嗜酸性 1.09-1.095 嗜中性 1.080-1.085 单核细胞 1.050-1.066 血小板 1.030-1.060 淋巴细胞 1.052-1.077 B淋巴细胞 1.062-1.075 T淋巴细胞 1.065-1.077 淋巴母细胞 1.065-1.077 自然杀伤细胞 1.050-1.070 |
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发布于 : 2021-07-25
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