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Pluriselect/pluriSpin® Human Monocyte Depletion/19-01002-31/10 ml
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Pluriselect/pluriSpin® Human Monocyte Depletion/19-01002-31/10 ml
品牌 / 
Pluriselect
货号 / 
19-01002-31
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Details:

pluriSpin®HumanMonocyteDepletionisdesignedtoisolatepure,viableanduntouchedmonocytes-freepopulationfromwholeblood,buffycoat,cordbloodorsimilarsamplematerialbynegativeisolation.Theproductlabelsmonocytes,whiletheisolatedhumanmonocytes-freepopulationareleftinthesample.WhencentrifugedoveradensitymediumtheunwantedcellspelletalongwiththeRBCs.Thepurifiedmonocytes-freepopulationarepresentasahighlyenrichedpopulationattheinterfacebetweentheplasmaandthedensitymedium.

MoreInformation:

Size2ml
SpeciesHuman
CellTypesMonocytes
SampleMaterialWholeBlood,PBMC,BuffyCoat,CordBlood,BoneMarrow,PrimaryCellSolution
Purity>90%
StorageConditionRoomTemperature
RegulatoryStatementForresearchuseonly.Notforuseindiagnosticprocedures,
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DNA荧光染色法: 1.原理:利用荧光染剂(bisbenzimide, Hoechst 33258)侦测支原体污染。此染剂会结合到DNA之Adenosine-Thymidine (A-T) rich区域,因为支原体之DNA中A-T含量占多数(55~80%),所以可将其染色而侦测。被支原体污染之细胞经染色后,在细胞核外 查看更多>
<IMGsrc="dxy_expriment/201812/pdf.gif"border=0><Ahref="http://cach 查看更多>
体外培养的中脑多巴胺能神经元MPTP损伤模型l实验操作:实验采用胚胎龄14一16天的大鼠,剖子宫取胎,取胎鼠中脑腹侧区。可将多个胚胎来源的组织收集在一起,置Fl2培养基(Gibco)至35mm的培 查看更多>
杂交瘤细胞(hybridoma)是一种在制备单克隆抗体过程中,用骨髓瘤细胞和B细胞融合而成的细胞的生物技术。杂交瘤细胞一般通过瘤细胞培养来制备。杂交瘤技术是指两个或两个以上细胞合并形成一个细胞的现象,它可使两个不同来源的细胞核在同一细胞中表达功能。首先来看下我们需要筛选的目的细胞,即B细胞和瘤细胞的融合细胞,但在细胞融合的过程中除了B细胞与瘤细胞 查看更多>
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1. 试剂:30%的醋酸,3只spectra/por管,HNP-3多克隆抗体,液氮2. 器械和设备:超声破碎仪,离心管,离心机,4度的冰箱,bicinchoninic酸蛋白测定系统,液氮仪,S-200HR柱,S-200HR柱,tricineSDS-PAGE,AU-PAGE及激光测定取来在COPD病人50毫升脓痰液超声 查看更多>
1、 仪器方面的最新进展 *自动化程度进一步提高,特别是EPC(电子程序压力流量控制系统)技术已作为基本配置在许多厂家的气相色谱仪上安装(如HP6890,Shimadzu GC-17A GC-2010, Varian 3800,PE Auto XL,CE Mega 8000等),从而为色谱条件的再现、优化和自动化提供 查看更多>
一、原理 细胞内不同结构的比重和大小都不相同,在同一离心场内的沉降速度也不相同,根据这一原理,常用不同转速的离心法,将细胞内各种组分分级分离出来。 分离细胞器最常用的方法是将组织制成匀浆,在均匀的悬浮介质中用差速离心法进行分离,其过程包括组织细胞匀浆、分级分离和分析三步 查看更多>
Fixation1) Collect 2 X 106 cells.2) Pellet cells by spinning at 1,000 rpm, 4°C for 5 minutes.3) Resuspend cell pellet in 1 ml of cold PBS.4) Fix cells by addin 查看更多>
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首先,它肯定不同于原代细胞系的,最大的区别,原代的心肌细胞基本不能分裂,而H9C2可以分裂,最大的区别了吧!原代心肌细胞会跳动,你的H9C2不会吧。虽然都是梭形的,但是H9C2来源于胚胎期心脏,而心肌细胞一般用新生大鼠分离获得。H9C2与原代心肌细胞有那么大区别,当然不能替代它,所以在研究 查看更多>
细胞的组织化学方法,是研究细胞成分常用的方法之一。它是利用化学试剂与细胞内的某些物质进行化学反应,从而在细胞局部形成有色沉淀物,再通过显微镜对组织内的生物化学成分进行定性、定位、定量研究。 一、Brachet反应一显示细胞内的DNA和RNA (一)原理 细胞经甲基绿一呱咯宁混合液处理后,其中 查看更多>
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请大神前辈指点指点,已经研三了,实验很不顺利,再这样都要延期的节奏了。请问最近急性分离出来的大鼠心肌细胞很不耐钙,做膜片钳封接不上可能是什么原因造成的?谢谢了!

想用二步酶消法来分离毛乳头细胞,一个毛囊大概有多少个毛乳头细胞?处于生长期的毛囊在显微镜下有什么特点?先谢谢大神们指点

各位大神,刚开始学习细胞培养,实验室也没有人做这方面的,希望有前辈做过毛囊干细胞的多多赐教!

我做的临床试验,就想简单检测PBMC细胞的凋亡,上流式检测,有啥检测效果好的步骤推荐一下,谢谢

刚买的分离液标本是人的为什么会有絮状物

最近在做黄体化颗粒细胞分离培养,但是注射器吸取大卵泡液或者从下颗粒细胞离心时就会凝固成果冻状,大家有碰到过这样的事情么?已经好几次了,一直是这样,大家给支个招吧

经过无数次的大鼠肝脏插针灌注,忍受过实验结果不理想的打击和折磨,今天终于成功了,特分享些相关图片以鼓励还在奋战中的网友们。


各位前辈,我现在要分离小鼠睾丸支持细胞进行培养,但是做了三次都没有贴壁,不知道问题出在哪,**指导!!!
我的步骤:
1、16-22天小鼠颈椎脱臼法处死后,75%酒精浸泡30秒消毒,睾丸取出后置预冷PBS,40分钟(路上所需时间)后开始处理。
2、剔除白膜,剪碎睾丸。0.25%胰酶(含edta)1.5ml/个睾丸37°C消化30-50分钟,等体积DMEM/F12含10%FBS终止消化,1000r/MIN离心5分钟,弃上液。
3、加0.1%胶原酶消化30分钟,过200目网筛,1000r/MIN离心5分钟,弃上液。
4、DMEM/F12含10%FBS5ml重悬后转如培养瓶,入孵育箱37°C5%CO2培养。
请教各位,我到底是哪里有问题,是胰酶消化的时间长了吗?

近期根据经验总结了原代肿瘤细胞分离培养的2个关键因素

1、组织的活性:如果我们取的都是坏死的组织或者结缔组织,我相信任何方法都不可能分离出来活的细胞的。另外,取完的组织要冷藏存放,并且越早分离越好,最好在24h内,最久不要超过48h。

2、组织的消化:在组织消化前,组织剪的越碎越好(1mm3左右为宜),组织的大小决定了组织的消化时间,不同组织消化时间差别较大:例如肺癌在2h-2.5h;食管癌在1个多小时。

希望可以帮到各位研友,另外如果大家有更好的经验可以一起来讨论!

前辈们好,近期老板布置任务需要分离小鼠肝脏细胞,查了好多文献,都没有写胶原酶的cat#,只写sigma订购,想请教下,是否有人做过,可以提供下货号和使用方法吗?十分感谢。另外,文中还提到digitonin,如果有一起用到的话麻烦帮我查看下,谢谢。

这两天实验需要分离乳鼠心肌细胞,操作了两次,但是效果都不好。细胞不贴壁,大量漂浮死亡。我是新手,也没有人指导,只能自己查文献摸索条件,想跟各位老师请教一下,争取早点培养成功。
大概步骤如下:c57小鼠大概六七只,酒精浸泡后不处死取出,迅速打开胸腔取出心脏放入冰PBS冲洗。待心脏取出完毕,冲洗移入有PBS青霉素小瓶中用眼科剪剪成较小组织块。
之后加入0.1%胰酶消化(之前浓度为0.25%,活细胞数量更少。)吹打1min.放入孵箱中3min.弃去上清,加入∥型胶原酶(0.1%)吹打10Min,放入孵箱15Min。取出后加入1ml胰酶。吹打1Min后加入含血清F12培养液终止消化,800转离心5Min。之后取沉淀重悬种板。90Min差速贴壁法纯化心肌细胞。
48h后只有少量(个位数)细胞贴壁,呈三角形。

第一次用0.25%胰酶时离心后有大量鼻涕样物质。
第二次胰酶浓度减小后没有,但细胞沉淀少,且为半透明微白。是不是离心时间不够。
感觉细胞整体状态都不好,几次都没有大量心肌细胞,更不用说观察到心肌细胞搏动。
老师们能不能帮忙分析一下是哪里的原因呢。
有没有比较稳定的小鼠乳鼠心肌细胞分离步骤呢。
希望大神快点出现。